Uriini üldanalüüsi laboratoorne uuring. Uriinianalüüs: kogumise liigid ja meetodid. B.3 Glükoosi määramine keemiliste meetoditega

Veterinaarmeditsiini osakond B.V. Usha, T.S. Elizarova, S.E. Zhavnis, G.M. Krjukovskaja

URINE LABORATOORILINE UURING

Looma kliiniline uuring ei anna alati täielikku pilti tema haiguse olemusest. Paljudel juhtudel on vajalik haige looma eritiste, eriti uriini põhjalik kliiniline ja laboratoorne uuring. Antakse uriini uuring suur tähtsus, kuna selles võib mõnel juhul kiiremini kui veres tuvastada patoloogilisi muutusi mitte ainult neerude ja kuseteede, vaid ka mao-, kõhunäärme- ja maksahaiguste korral.

Praegu on urodiagnostika kliinilises veterinaarmeditsiinis üks juhtivaid kohti. Õigeaegsed uriiniuuringud aitavad kaasa mitmete haiguste varajasele diagnoosimisele, samuti suurendavad käimasolevate ravi- ja ennetusmeetmete tõhusust. See kõik on eriti oluline aretus- ja tootmisloomade ning lihatööstuse jaoks nuumatavate loomade puhul,

Soovitatav on uurida iga haige looma uriini, kuna see võib näidata patoloogilisele seisundile iseloomulikke muutusi, isegi kui puuduvad väljendunud kliinilised sümptomid. Samas pole see alati vajalik täielik analüüs uriin. Paljudel juhtudel piisab, kui teha kindlaks, kas uriini koostises ja setetes - vererakud, epiteel, silindrid - on normist kõrvalekaldeid. Kõigil juhtudel sõltub uuringute olemus ja ulatus keha patoloogilise seisundi näidustustest ja tüüpilistest sümptomitest. Seega tuleks urodiagnostika meetodeid laialdaselt soovitada nii igapäevaseks kliiniliseks tööks kui ka loomade kliiniliseks läbivaatuseks. Kavandatav käsiraamat süstematiseerib kliinilistes diagnostikalaborites kasutatavad uriini laboratoorse analüüsi meetodid, annab kvalitatiivsete uuringute tulemuste lühitõlgenduse ja annab kvantitatiivsed kriteeriumid tulemuste hindamiseks.

URINI SAAMISE JA SÄILITAMISE MEETODID

Täpsus laboriuuringud sõltub suuresti sellest, kuidas, millal uriin võetakse ja diagnostikalaborisse toimetatakse. Viimased tuleb koguda korralikult, puhtalt, ilma võõrlisanditeta. Enne uriini võtmist on vaja looma välissuguelundeid tualettida.

Tavalistel kliinilistel eesmärkidel piisab ühest portsjonist uriinist koguses 100-200 ml. Haigete loomade hommikust kontsentreeritud uriini on parem uurida tühja kõhuga, kuna see koguneb öösel, kui loom puutub vähem kokku väliste teguritega, mis mõjutavad öö kvalitatiivset ja kvantitatiivset koostist. Mõne haiguse korral on uriini kogumine vajalik 6,12 tundi, mõnikord ka terve päev. Uriini päevase koguse uurimine võimaldab teil saada täieliku ülevaate neerude funktsionaalsest seisundist, kuna päeva jooksul on üksikud uriiniportsjonid ebavõrdsed. suhteline tihedus, happesus ja keemiline koostis. Näiteks päevases uriinis on kerget proteinuuriat raskem tuvastada, kuna punased verelibled ja kipsised lahustuvad kiiresti.

Uriini muutuste objektiivne hindamine selle analüüsi ajal sõltub suuresti saamise meetoditest. Uurimiseks saadakse loomade uriin järgmistel viisidel:

loomuliku urineerimise ajal kogutakse uriin puhtasse laia suuga anumasse;

põit masseerides (väikeloomadel väljapoole, suurtel loomadel rektaalselt),

Proteinuuria on tõsine protsess, sõltumata sellest, millist patoloogiat see kinnitab. On äärmiselt oluline, et kiire diagnostika põie eemaldamine viidi läbi nii, et oleks võimalik määrata sobiv ja täielik ravi neerufunktsioon ei ole kadunud.

Kuna proteinuuria ei näita enamasti patoloogiaid, mis nõuavad viivitamatut arstiabi, on põhjused, mis ei kujuta ohtu patsiendi elule ja on farmakoloogilise sekkumisega kergesti pöördutavad. Nende hulka kuuluvad kuseteede põletik, toksilised toimed erinevaid aineid, hüpertensioon või pikaajaline palavik.

otse põiest kateteriseerimise teel. Kateetriga uriini võtmise vastunäidustus on mädane põletik kusiti ja tühi põis. Pullide, jäärade ja metssigade puhul on peenise sigmoidse kõveruse tõttu kateteriseerimine keeruline.

suurte loomade uriin päevas kogutakse pissuaaridega, väikestelt loomadelt - spetsiaalsetesse rakkudesse.

Kui arst peab proteinuuriaga tegelema, peab ta võimalikult kiiresti selle põhjuse välja selgitama. Valk uriinis võib viidata kuseteede patoloogiatele, aga ka haigustele, mis mõjutavad kogu keha. Esimesena mainitakse neeru- ja vereloomesüsteemi vähki. Väga iseloomuliku uriinianalüüsiga proteinuuria võib viidata hulgimüeloomile ehk hüperplaasiale, mis ründab hematopoeetiline süsteem ja piisava puudumisel terapeutiline ravi viib paratamatult surmani.

Millistes olukordades peame olemasoleva proteinuuria pärast muretsema?

Teised proteinuuriaga kaasnevad haigused võivad olla ensümaatilised vaegused ja süsteemsed seisundid, mis võivad ravimata jätmise korral muuta patsiendi elu tema jaoks palju raskemaks. Stress, unisus, stress Kui keha on väsinud või puutub kokku kroonilist ebakindlustunnet, närvilisust ja stressi põhjustavate tegurite pikaajaliste mõjudega, võivad neerud reageerida suurenenud valgukaotusega. Samamoodi intensiivse korral füüsiline mõju väljaspool patsiendi võimeid või pikka püstiasendis viibimist esineb nn ortostaatiline proteinuuria. Ootamatud kulutused Väga sageli on uriiniproovis, mis uuringuks antakse, ka muid organismist väljuvaid eritisi, mis paiknevad kusitis. Kuna laboratoorne uriinianalüüsi analüsaator vaatab oma setet mikroskoobi all, saab see kindlaks teha, kas leitud valk on füsioloogiline lisand või tõend. arenev patoloogia kuseteede süsteem või muu haigus, mis on seotud valgu esinemisega uriinis. Naistel võib proteinuuria väga sageli viidata tupelima või kõhulahtisuse esinemisele, meestel on proteinuuria aga tingitud sperma olemasolust uriinis. Neid olukordi ei saa alati vältida, kuid piisavate hügieenimeetmete järgimine uriini kogumise ajal minimeerib teiste kehavedelike tarbetu segunemise riski uriiniga. Belomükoos, mis ei ole patoloogia, võib tekkida ka neerude ja nende ümbruse äärmuslike temperatuuride mõjul. Need on näiteks väga populaarsed mittesteroidsed põletikuvastased ravimid, ravimid, mis vähendavad vererõhk või mõned antibiootikumid.

• Need on normaalsed ja normaalsed olekud mis ei vaja mingit ravi.
• Termiline mõju neerudele.
• See juhtub ülekuumenemise või liigse jahutamise korral.
• Ravimid ja proteinuuria.
• Mõned ravimid võivad samuti soodustada valgu esinemist uriinis.

Selline proteinuuria ei ole samuti põhjust muretsemiseks, vaid peaks olema hoiatusmärk, et ülekasutamine need ravimid võivad kahjustada neere.

Lisaks võib lehmadel ja märadel urineerimise esile kutsuda ureetra suu ärritamise ning suguelundite huulte, kõhukelme masseerimisega lammastel ja kitsedel – ninaavade 20-30 sekundiks kinni keeramine. Pullidel saab uriini väljutamist kiirendada, kui asetada ja hoida eesnaha avause küljes. 30-40 Koos vatitups sooja veega niisutatud. Hobustel võib urineerimist esile kutsuda kerge müra tekitamine (kaera valamine).

Tuleb meeles pidada, et mida lühem on ajavahemik uriini võtmise ja uurimise vahel, seda täpsem on analüüs. Uriini on kõige parem uurida hiljemalt 1,5 tunni jooksul alates proovi võtmise hetkest. Selle pikaajaline seismine toob kaasa füüsikaliste (fenooli oksüdeerumise tõttu tumeneb) ja keemiliste omaduste muutumise: uriini pH nihkumine leeliselisele poolele (karbamiidi bakteriaalne lagunemine ammoniaagiks); bilirubiini ja urobilinogeeni oksüdatsioon; bakterite, seente paljunemine ja nende glükoositarbimine; uriini setete elementide (leukotsüüdid, silindrid, kristallide sadestumine) hävitamine.

Uriini madala suhtelise tihedusega (alla 1,010) on soovitatav teha mikroskoopia kohe pärast selle kogumist, kuna leukotsüüdid ja hüaliinsilindrid lahustuvad seistes kiiresti. Kui uriini kiire uurimine ei ole võimalik, võib seda hoida suletud anumas külmkapis (+4 ° C), külmutada või konserveerida. Külmutamine kiirendab rakkude lagunemise protsessi, kuid säilitab enamiku keemilistest ühenditest (va lämmastik, uurea, antidiureetiline hormoon ja adrenaliin). Uriini saab säilitada tümooliga (1-2 kristalli 200-250 ml uriini kohta), vesilahus kloroform (1-2 tilka, kiirusega 5,0-7,5 ml kloroformi 1 liitri vee kohta), formaldehüüd (1-2 tilka 40% lahust 25 ml uriini kohta), 1% boorhape (5-8 tilgad 200-250 ml uriini kohta). Antibiootikumiga säilitamisel lahjendatakse ja lisatakse uriinile kiirusega 50-100 tuhat ühikut. 100 ml uriini kohta. Kõige sagedamini kasutatav säilitusaine on tolueen (katta uriini pind rassikihiga). Siiski tuleb meeles pidada, et tolueen mõjutab ketoonide (atsetooni) kvantitatiivset määramist atsetooni vähenenud lahustuvuse tõttu tolueenis. Kloroform lahustab rasvu, vereelemente ja silindreid, muutes suhkru määramise keeruliseks. Tümool muudab valgu määramise keeruliseks (lämmastik- ja sulfasatsüülhappega, Extoni reaktiiviga). Formaldehüüd muudab enamiku keemilistest uuringutest võimatuks, kuid säilitab hästi orgaanilisi setteid. Bakterioloogiliseks uuringuks mõeldud uriin ei kuulu konserveerimisele. Laborisse toimetatakse uriin koos suunaga, kus on vaja märkida: mida uurida ja millist säilitusainet kasutati.

Töö mugavuse huvides määratakse esmalt uriini füüsikalised omadused, seejärel viiakse läbi selle keemiline uuring ja pärast seda tehakse setete mikroskoopiline uurimine. Saadud tulemused registreeritakse spetsiaalsel kujul (lisa).

FÜÜSIKALISTE OMADUSTE MÄÄRAMINE

Uurides füüsikalised omadused uriini määrab selle päevane kogus, värvus, läbipaistvus, konsistents, lõhn ja suhteline tihedus. Tuleb välja tuua nende uuringute lihtsus ja kättesaadavus ning tulemuste suur informatiivne väärtus loomade seisundi hindamisel. Kliiniliselt tervete loomade uriini füüsikaliste omaduste näitajad on toodud tabelis 1. Kõik need omadused sõltuvad otseselt sööda kogusest ja koostisest, välistemperatuurist, veetarbimisest, kehalisest aktiivsusest, funktsioonist higinäärmed, südameseisund, sooled, neerude sekretoorne aktiivsus.

Loomade poolt päevas eritatava uriini kogus määratakse iga üksiku portsjoni mõõtmisel gradueeritud keeduklaasi või silindriga. Tulenevalt asjaolust, et loomadelt on raske kogu uriini koguda, on sisse kliiniline seade võite kasutada lihtsamat ja vähem aeganõudvat meetodit. Meetod seisneb selles, et arvutatakse urineerimiskordade arv päevas ja korrutatakse ühe urineerimistoiminguga eritunud uriini keskmise kogusega.

Erinevates füsioloogilistes ja patoloogilistes tingimustes võivad uriini eraldumises tekkida erinevad muutused. Polüuuria on uriini päevase koguse suurenemine. Seda seostatakse neerude verevoolu suurenemisega (suure koguse mahlakad sööda söötmisel, mis sisaldab vähe valku, sooli toidus, annab diureetikume, glükokortikoide, taastumisperioodil pärast palavikulisi seisundeid, närviline erutus, tursed, eksudaadid, transudaadid, diabeet, parenhüümikahjustus neerud, püomeetria). Polüuuriaga võivad hobused mitme päeva jooksul eritada 30–60 liitrit uriini päevas. Oliguuria- päevase uriinikoguse vähenemine (joogivee puudumise, tugeva higistamise, kõhulahtisuse, oksendamise, tursete, transudaatide ja eksudaatide moodustumise, neeru- ja südamehaiguse, kusejuhade ummistuse, verekaotuse, mürgistuse sooladega raskmetallid, sulfoonamiidid, aminoglükosiidid). Pollakiuria(pollakisuuria) - sagedane urineerimine, mille korral uriini koguhulk ei suurene (tsüstiit, prostatiit, vaginiit, urolitiaas). Oligakiuria(oligokisuuria) - uriini eritumine pärast pikka aega. Anuuria- uriinierituse täielik lõpetamine (keha dehüdratsioonist tingitud neerude verevoolu kahjustuse, kuseteede ummistuse, kõhukelmepõletiku, raskmetallide sooladega mürgistuse korral). Isuria - uriinipeetus, kui haige loom ei suuda põit tühjendada. Enurees - tahtmatu urineerimine (krooniline põiepõletik, urolitiaas, ristluu lülisamba kahjustused, väikeaju, tupe eeskoja anomaaliad, põie ja ureetra kaasasündinud hüpoplaasia, kastreeritud loomade rasvumine). noktuuria- öise diureesi ülekaal päevasest (neeru- ja südamefunktsiooni kahjustusega vanadel haigetel loomadel). Tervetel loomadel on päevase ja öise diureesi suhe 3:1. Düsuuria- sagedane valulik urineerimine (tsüstiit, uretriit, prostatiit, vaginiit, urolitiaas). Stranguria - valulik urineerimine. tenesmus- valulikud tungid.

uriini värvus oleneb selle suhtelisest tihedusest, küllastusastmest, pigmentide (urokroom A ja B, urokromageen, urobilinogeen, koprofiriin, uroerütriin, hematoporfüriin, uroroseiin jt) olemasolust, sööda iseloomust. Tervetel loomadel on uriin helekollane kuni helepruun, erinevate toonidega (tabel 1). Värvuse muutus võib olla tingitud vere, hemoglobiini, sapipigmentide, rasvade ja diagnostilistel või ravieesmärkidel organismi viidud ainete esinemisest uriinis. Parim on määrata värvi silindris (samba paksus mitte rohkem kui 5 cm) päevavalguses valgel taustal. Eristada tuleks uriini värvi:

kollane varjunditega: kahvatukollane, helekollane, tumekollane;

punane varjunditega: punane-kollane, tumepunane;

pruun varjunditega: pruun-punane, tumepruun, must-pruun.

Kahvatukollane (mõnikord värvitu) madala erikaaluga uriin on iseloomulik polüuuriale (diabeet, nefroskleroos, ketoos, hüloproteineemia). Suure erikaalu ja tumedama varjundiga kontsentreeritud uriin - tavaline esinemine oliguuriaga (tugev higistamine, palavik). Uriini värvimine safrankollase, pruunikaskollase või pruunikasrohelise varjundiga näitab kollatõvega seotud haiguste esinemist, samuti valkude lagunemisprotsesside suurenemist soolestikus. Viimasel juhul ilmub uriini suurenenud kogus indoksüülväävelhappeid, mis võivad laguneda, moodustades indigo. Uriini kollane värvus muutub märgatavamaks, kui seda loksutada silindris, kus tekib palju eredat vahtu. kollast värvi. Kollase varjundiga uriini täheldatakse leptospiroosi, entsefalomüeliidi, maksakahjustusega seotud mürgistuse korral.

Mädalisandid annavad uriinile hallikasvalge värvuse, mis tekib urogenitaalsüsteemi mis tahes osa või külgnevate organite põletikuliste protsesside käigus (tsüstiit, püelonefriit, vaginiit). Piimvalge uriin on lipuuria (neerukoe rasvade degeneratsioon ja lagunemine) ja küluuria (neerude lümfostaas) märk. Esimesel juhul sisaldab uriin tohutul hulgal rasvatilku ja rasvasilindreid.

Erinevate varjunditega punast värvi uriin on tingitud vere (hematuuriaga), selles lahustuvate pigmentide: hemoglobiini ja methemoglobiini (hemoglobinuuriaga) või sööda (peet) segunemisest.

Hematuuria on sümptom paljudest kehahaigustest, millega kaasnevad neerude, neeruvaagna, kusejuhade, põie ja kusiti. Visuaalselt saab vere segunemist uriinis määrata, kui punaste vereliblede kontsentratsioon selles on üle 25 000 1 μl kohta. Uriin on sel juhul punane, settes on verehüübed, erütrotsüüdid, supernatant on selgitatud. Seda seisundit nimetatakse hematuriaks. Kui vere segunemine ei põhjusta uriini värvimist, siis räägitakse mikrohematuuriast. Sageli leitakse see uriinisetete mikroskoopia abil. Makroskoopilist hematuuriat on kolm vormi: esialgne (esialgne), kui veri vabaneb ainult uriini esimese osaga (koos verejooksuga kusitist) ja ülejäänud uriin on normaalselt värvitud; terminal, kui veri ilmub alles urineerimise lõpus (koos verejooksuga põiest); kokku, kui kogu uriin on verega määrdunud. Hemoglobinuuria tekib: punaste vereliblede suurenenud hemolüüsi tagajärjel vereringesse mille tulemusena areneb hemoglobineemia. Neerude hemoglobiiniläve tõusuga hakkab see erituma uriiniga. Hemoglobinuuriaga on uriin läbipaistev, sete koosneb pigmendisilindritest ja hematoidiini graanulitest, uriini värvus tsentrifuugimisel ja filtreerimisel ei muutu. Kasutades neid lihtsad testid hematuuriat on võimalik täpselt eristada hemoglobinuuriast, millel on kindlasti suur tähtsus raviarsti praktikas.

Uriini värvus muutub ka erinevate ravimite kehasse toomisel:

punane, punakaspruun värv - antipüriini, amidopüriini, fenotiasiini, sulfaravimite, fenoolftaleiini, aaloe (rohutoidulistel), santoniini (koos leeliseline reaktsioon uriin), karboolhape, aniliinvärvid,

roosa värv - atsetüülsalitsüülhappe, furosemiidi sisseviimisega;

tumepruun või must - salooli, naftooli, fenüültsülaadi andmisel,

tume kuni tumeroheline - fenooli, tõrva, kresooli andmisel;

rohekaskollane, kollakaspruun, pruun - kui antakse eosiini, riboflaviini, santoniini (happega uriini reaktsioonid), pikriinhape, klorokviin, rabarber, Aleksandria leht;

sinine - metüleensinise, trüpanblau, indigokarmiini andmisel.

Tuleb meeles pidada, et sama värvi uriin võib olla erinevate haigustega.

Uriini selgus määratakse 5 cm läbimõõduga klaassilindris päevavalguses vastavalt trükiteksti loetavuse astmele. Järgige ühte järgmistest hägususe määratlustest:

nõrk, mõõdukas, suur;

läbipaistev, läbipaistmatu, hägune;

täielik, mittetäielik, ebaselge, hägune.

Tervete loomade äsja vabanenud uriin on puhas, selge ja seteteta, välja arvatud ühe sõraliste uriin (tabel 1). Hobuse uriin on hägune, kuna selles on kaltsiumkarbonaati, lahustumatuid fosfaate ja lima hõljuvas olekus (koos diferentsiaaldiagnostika uriin selgitatakse vesinikkloriidhappe lisamisega). Seetõttu on kerge, selge ja settevaba uriini tuvastamine hobustel patoloogilise protsessi (polüuuria, gastroenteriit, kopsupõletik, paralüütiline hemoglobinuuria, siberi katk) olemasolu näitaja. hägune uriin teistel loomaliikidel viitab see kuseteede patoloogiale ja setteid uurides sisaldab tavaliselt sooli (kusihape, fosfaat ja süsihape), epiteelirakke, lima, rasvatilku, vormitud elemendid veri. Hägususe põhjuse eristamine on vajalik keemiliselt ning sõltub sööda kogusest ja kvaliteedist, neerude, higinäärmete talitlusest, sooletegevusest, südamest ja hingamisteedest (tabel I).

Uriini lõhn omane erinevatele loomaliikidele ja sõltub lenduvate ainete kontsentratsioonist selles rasvhapped(Tabel 1). Mida kontsentreeritum on uriin, seda rohkem väljendub selle iseloomulik lõhn. Vesine uriin polüuuriaga on peaaegu täielikult lõhnatu. Määrake värske uriini lõhn. Kui lõhn on märkamatu, on vaja anumat loksutada uriiniga või veidi sooja uriini osaga.

Uriinil on järgmised patoloogilised lõhnad: mädane (mädane-nekrootilised protsessid põis), ammoniaak (ammoniaagi käärimine põies, proovi pikaajaline säilitamine õhus), atsetoon (ketoos, sünnitusjärgne parees, suhkurtõbi), puuviljane (ketoos, diabeetiline kooma, listerioos), kloroformi magus lõhn (askariaas). Uriini lõhn sõltub suukaudselt manustatavatest ravimitest, mis erituvad organismist koos uriiniga. Mentool annab uriinile piparmündi, tärpentini ja palsamide lõhna – kannike lõhn, kamper, fenool, eeterlikud õlid, palderjan säilitavad oma spetsiifilise lõhna.

Uriini konsistents määratakse veresoonest anumasse tilkülekandega. See võib olla vedel, vesine, limane (siirupitaoline). Vedelat uriini peetakse siis, kui uriinipiisad on ümarad ja murduvad kiiresti. Niitide kujul veniv või veniv tilk iseloomustab limaskesta konsistentsi.

Tabel 1.

Uriini omadused kliiniliselt tervetel loomadel

(vastavalt B.V. Usha, I.M. Belyakov, 2008, 2013)

Igat tüüpi koduloomadel, välja arvatud ühe sõralised, on uriin õhuke ja vesine. Hobustel on uriin limane, mutsiini ja nukleoalbumiini segunemise tõttu viskoosne. Paks, limane, siirupine uriin teistel loomaliikidel on patoloogiline nähtus, mis viitab kuseteede organite põletikule.

Uriini suhteline tihedus (OPM) oleneb selles lahustunud mineraalidest. Tervete loomade TMR-i kõikumised sõltuvad sööda kogusest ja kvaliteedist, neerude, higinäärmete funktsioonist, sooletegevusest, südamest ja hingamisteedest (tabel 1). OPM määramine kliinilises ja laboratoorses praktikas viiakse läbi uromeetri (hüdromeetri), refraktomeetri (Uricon-N), diagnostiliste ribade (Miles, Boehringer Manheim, Lachem) abil, sõltuvalt proovi mahust.

Uriin valatakse silindrisse; langetage uromeeter nii, et see hõljuks selles vabalt. Skaala näidud võetakse alumise meniski tasemel (kui on tekkinud vaht, eemaldatakse see filterpaberi abil). Pärast tööd pestakse uromeetrid veega, desinfitseeritakse ja kuivatatakse ning hoitakse pappkastides. Uromeetreid on kahte tüüpi - ühe päeva uriini väiksema erikaaluga (1,000-1,025); teine ​​on suurema erikaaluga uriini jaoks (1,025-1,050). Praegu on universaalsed uromeetrid, mille skaala jaotused on vahemikus 1000 kuni 1050. Uromeetri näidud arvutatakse temperatuurile 15-20 C. Kui uriini temperatuur on kõrgem kui uromeetril näidatud temperatuur, siis iga täiendava 3 o C kohta lisatakse uromeetri näidu neljandale numbrile üks, kui see on väiksem, siis see lahutatakse. Proteinuuria ja glükosuuria korral OPM suureneb, seetõttu tehakse korrektsioon: iga 0,1 g / l (1%) suhkru kohta väheneb OPM indeks 0,004 ja iga 0,3 g / l (3%) valgu kohta. - 0,001 võrra.

Väikese koguse uriiniga lahjendatakse see destilleeritud veega 2-3 korda, määratakse OPM ja kaks viimast numbrit korrutatakse lahjendusastmega. Mõne tilga uriini juuresolekul määratakse OPM Tol, Sanfordi ja Wellsi meetodil. Silindrisse valatakse võrdsetes osades kloroformi ja benseeni segu ning langetatakse tilk uuritavat uriini. Tilga sukeldamine põhja näitab, et OPM on suurem kui reaktiivide segu suhteline tihedus. Kui tilk jääb pinnale - madalamale. Kloroformi (kui tilk läheb põhja) või benseeni (kui tilk on pinnal) lisamisega reguleeritakse segu suhtelist tihedust nii, et tilk peatub vedeliku keskel. Sel juhul on OPM võrdne segu suhtelise tihedusega, mis määratakse uromeetri abil.

OPM-i saab määrata refraktomeetria abil, mis on üsna täpne, kuid kallis. Selle eeliseks on see, et see nõuab ainult 1-2 tilka uriini. Täpsete väärtuste saamiseks on soovitatav uurida uriiniproovi kl toatemperatuuril ja tsentrifuugige, et eemaldada uriinist selles suspendeeritud valguse difraktsiooni sete. Filtreeritud proovi OPM erineb neljakohalise numbri viimases numbris mitte rohkem kui 1-2 ühiku võrra.

OPM-indikaatori abil saab määrata neerude funktsionaalset võimekust. Kui OPM kõigub kahetunnise vaatluse ajal laias vahemikus, siis see viitab Schleyeri sõnul neerude heale funktsionaalsele seisundile. Vastupidi, püsivalt madal (isostenuuria) või kõrge PMR kõigis mõõtmistes 2 tunni jooksul viitab tõsisele neerupatoloogiale.

Uriinis lahustunud kuivainete koguse määramiseks korrutage OPM indikaatori kaks viimast numbrit Long koefitsiendiga (2,66) või Hasceriga (2,33), Näide: päevane uriinikogus -6 l, suhteline tihedus - 1,025; 25x2,33=58,25 g tahked ained 1 liitris ja päevases koguses - 58,25x6 = 349,5 g.

OPM-i vähenemine näitab neerude ebapiisavat võimet uriini kontsentreerida ja seda täheldatakse polüuuriaga (atsetoneemia, nefriit, nefroskleroos, diabeet insipidus). OPM suurenemine on iseloomulik suhkurtõve, nefroosi, nakkus- ja palavikuhaiguste korral, millega kaasneb oliguuria, kõhulahtisus, oksendamine ja higistamine.

URINI KEEMILINE UURING

Uriini keemilises uuringus piirdutakse enamasti pH, valgu, glükoosi, ketoonkehade, verepigmentide, indikaani, sapphapete ja pigmentide määramisega. Keemilise analüüsi väärtus seisneb selles, et seda saab kasutada teatud patoloogiliste protsesside käigus uriini sattuvate ühendite tuvastamiseks. Kõiki neid keemilisi uuringuid tuleks alati hinnata ainult koos teiste uuringutega ja seoses haiguse kliiniliste sümptomitega. Tuleb meeles pidada, et praegu väljastatakse uriini kiire keemilise uuringu läbiviimiseks spetsiaalsed diagnostilised paberitestid, mis võimaldavad teil koheselt teha poolkvantitatiivset analüüsi. Vaatamata analüüsi lihtsusele on teatud vead võimalikud, seetõttu on positiivse või kahtlase reaktsiooni korral vaja seda indikaatorit uriinis reaktiivide abil kvantifitseerida.

Uriini reaktsioon loomadel sõltub nende liigist, söödast ja keha funktsionaalsest seisundist (tabel 1). Taimtoiduliste uriin on leeliseline, mis on tingitud taimsest toidust. Orgaaniliste hapete või aluste soolad, mis põlevad vahetuse käigus süsinikdioksiid, on leeliseliselt reageerivate toodete moodustumise peamine allikas. Lihasööja uriin on happeline, see sõltub happeliste ühendite kuhjumisest väävli, fosfori, söödavalkude oksüdatsiooni tulemusena. Uriini happesuse olemuse järgi jaguneb uriin potentsiaalseks (tiitritav) ja tõeliseks (aktiivne). Potentsiaalne happesus sõltub hapete üldsisaldusest uriinis, sõltumata nende dissotsiatsiooni astmest, st võimest anda lahusesse vesinikioone. Uriini tegelik happesus sõltub vesinikioonide kontsentratsioonist ja on tingitud hapete dissotsiatsiooni astmest uriinis.

Vesinikuioonide kontsentratsiooni näitab pH väärtus. See indikaator määratakse värske uriiniga, kuna seismisel eraldub süsinikdioksiid ja pH nihkub aluselise poole. Uriini reaktsiooni uurimine viiakse läbi vedelate indikaatorite abil vastavalt Andrejevi (indikaator bromtümoolsinine, pH vahemik = 6,0-7,6) ja Magarshaki järgi (neutraalse punase ja metüleensinise lahuste indikaatorsegu, pH vahemik = 6,2-7,8 ), indikaatorpaber ("Rifan" (Venemaa), universaalne "RKS" (Venemaa), "Nonofan" (Tšehhi), "Multistics" (Austria), "Combur-test" (Saksamaa), "Biofan-Z" ( Saksamaa) ; pH vahemik = 1,0-10,0). Vajadusel rohkem täpne määratlus Uriini pH määramiseks kasutatakse meetodeid: elektromeetriline (pH-meetril), tiitrimine, kolorimeetriline (kasutades indikaatorite komplekti ja Michaelise komparaatorit).

Happelist uriini täheldatakse nälgimise, ketoosi, koliidi, kopsupõletiku ja muude palavikuga kaasnevate haiguste ajal. Lihasööjate ja kõigesööjate värskelt eritunud uriini leeliseline reaktsioon viitab kuseteede kudede lagunemisele neoplasmide ja uriini fermentatsiooni tagajärjel tekkiva põiepõletiku (tsüstiit, püeliit) tõttu. Atsidoosiga uriinis võib kloriidide hulk suureneda, naatriumi ja kaaliumi sisaldus väheneda ning alkaloosi korral vastupidi. Seetõttu suureneb uriini pH määramise infosisaldus koos teiste laboratoorsete ja kliiniliste näitajate tulemustega, samuti uriini ja vere pH võrdlemisel (tabel 2).

Standardiseeritud tehnoloogia uriini kliiniliseks laboratoorseks analüüsiks. Analüüs uriin üldine.

Päris standardiseeritud analüütiline tehnoloogia kehtestab rakendamiseks ühtsed nõuded üldine analüüs uriin meditsiiniasutuste kliinilistes diagnostikalaborites (CDL).

1. Uuringu eesmärk

Tehnoloogia "Üldine uriinianalüüs" viiakse läbi haiguste diagnoosimiseks, ennetavate uuringute käigus, haiguse kulgu ja ravi efektiivsuse jälgimiseks.

Uriini uuringul on suur diagnostiline väärtus mitte ainult neeruhaiguste, vaid ka paljude teiste kehaorganite ja süsteemide puhul.

Üldise uriinianalüüsi meetodite kompleks sisaldab:

Üldisi füüsikalisi omadusi kirjeldav makroskoopiline hindamine;

Füüsikalised mõõtmised (maht, suhteline tihedus);

Keemilised uuringud, mis tehakse diagnostiliste testribade abil (kvalitatiivne ja poolkvantitatiivne analüüs): pH, suhtelise tiheduse, valgu, glükoosi, ketoonkehad bilirubiin, urobilinogeen, veri, leukotsüüdid, nitritid, askorbiinhape; või keemilised meetodid testribadega saadud valgu, glükoosi ja muude näitajate määramise tulemuste kinnitamiseks.

Uriini setete mikroskoopiline uurimine.

2. Nõuded tehnoloogia rakendamise tagamiseks

2.1 Nõuded spetsialistidele ja abipersonalile

Selle tehnoloogia rakendamisega seotud kõrg- ja keskharidusega spetsialistide nimekiri:

glükoos,

ketoonkehad,

bilirubiin,

urobilinogeen,

Erütrotsüüdid / hemoglobiin,

Nitritid

Leukotsüüdid (neutrofiilid).

C-vitamiin

MÄRKUS 1 Askorbiinhappe katsetsooni kasutatakse kontrollparameetrina, et võtta arvesse ebaõigete tulemuste saamise ohtu, näiteks olulised näitajad nagu hemoglobiin, glükoos, bilirubiin, urobilinogeen, suhteline tihedus. Askorbiinhappe sisalduse hindamise tsooni puudumisel tuleb pöörata tähelepanu patsiendi võetud ravimite loetelule.

Uuringu jaoks kasutatakse värskelt kogutud uriini, mida hoiti enne analüüsi mitte rohkem kui neli tundi. Kui testimine hilineb, tuleb uriini hoida külmkapis. Säilitusainete kasutamine on ebasoovitav, kuna need võivad mõningaid teste pärssida.

Enne uuringut segatakse uriin põhjalikult (ilma vahuta).

Uurimismetoodika: eemaldage ümbrisest analüüsiks vajalik arv ribasid ilma testpiirkondi kätega puudutamata. Anum tuleb kiiresti kaanega sulgeda, et vältida õhuniiskuse sissepääsu.

MÄRKUS 2 Kaanes või kanistri sees on kuivatusaine, mis imab kanistri avamisel niiskust. See tagab ribade pika säilivusaja ka pärast korpuse avamist.

Pärast liigse uriini eemaldamist tuleb riba hoida horisontaalselt, et vältida ristsaastumist naaberpiirkondade reaktiividega. Peegeldaval fotomeetril uriinianalüüsi tulemuse määramisel asetatakse diagnostiline riba pärast liigse uriini eemaldamist spetsiaalsesse hoidikusse, konveierisse või tulemuse lugemise kohta (olenevalt seadme konstruktsioonist). Uriinianalüsaator (peegeldav fotomeeter) teostab parameetrite poolkvantitatiivset mõõtmist standardrežiimis.

MÄRKUS 3. Mõne analüsaatoriga töötades pole see vajalik esialgne eemaldamine liigne uriin, kuna see eemaldatakse riba liikumise ajal konveieril fotomeetrile, milles tulemus tuvastatakse. Mõnikord on analüsaatoril eraldi funktsioon liigse uriini eemaldamiseks.

Pärast riba asetamist analüsaatorisse toimub mõõtmine ja tulemus prinditakse välja. Märgitakse patoloogilised leiud erilised märkmed(lipud). Poolkvantitatiivse määramisega peegeldavatel fotomeetritel uriini uurimiseks mõeldud testribades on ette nähtud nn kompensatsioonitsoonid. Need tsoonid on tavaliselt valge värv, ei ole reaktiividega immutatud. Need on omamoodi "tühjad proovid", mille seadistamine on vajalik keemiliste komponentide määramisel reaktsioonitsoonide värvimise instrumentaalseks kompenseerimiseks loodusliku uriiniga.

Mõnel juhul (hädaabi uriinianalüüs fotomeetri puudumisel, parameetrite mõõtmine arsti vastuvõtul üldpraktika, taustavärvi muutva intensiivse uriini värvuse juuresolekul), saab tulemusi visuaalselt hinnata teatud aja möödudes, mis on juhistes märgitud. Usaldusväärsete tulemuste saamiseks tuleb kokkupuuteaega täpselt jälgida. Pärast riba kastmist uriiniga võrreldakse katsetsoonide värvi pliiatsikarbil oleva värviskaala vastavate tsoonide värviga ja tulemus salvestatakse.

Ajavahemik uriini ribale kandmise ja tulemuse lugemise vahel on määramise täpsuse jaoks kriitiline: liiga lühike intervall võib põhjustada tulemuse alahindamise värvireaktsiooni ebatäielikkuse tõttu ja liiga pikk intervall. värvitud toote ebastabiilsusest tingitud intervall.

Tulemuste visuaalset hindamist ribade hoidmiseks mõeldud konteineritele trükitud värviskaalade järgi saab väljendada nii kontsentratsiooniühikutes kui ka tulemuste poolkvantitatiivse (järgulise) hinnanguna: “negatiivne” (-), “ kahtlane" (+-), "positiivne » (+, ++, +++ või ++++).

Diagnostiliste testribade abil saadud uuringute tulemuste kinnitamiseks kasutatakse keemilisi meetodeid (lisa B).

3.6 Uriini mikroskoopiline uurimine

3.6.1. Nõuded uriini setteproovile mikroskoopiliseks uurimiseks.

Uuring viiakse läbi uriini esimeses hommikuses portsjonis, mis on kõige kontsentreeritum, mis aitab kaasa setteelementide arvu suurenemisele, või juhuslikus (randomiseeritud) osas. Enne uuringu läbiviimist peab arstil olema teave uriini kogumise aja ja tulemuste kohta füüsikalised ja keemilised uuringud. Uriiniproovi säilitamistingimusi tuleb rangelt järgida. Settetest tuleks teha 4 tunni jooksul pärast uriini kogumist ning hilisemaks testimiseks tuleks uriiniproovi hoida külmkapis ilma külmutamata. Enamik säilitusaineid segavad testribade tulemusi ja on seetõttu ebasoovitavad, kuid vajadusel võib kasutada tümooli (mitu kristalli uriiniproovi kohta). Stabilisaatorit sisaldavad vaakumtorud rakulised elemendid, mis ei mõjuta testribade tulemusi.

3.6.2. Mikroskoopiliste uuringute tüübid.

Uriini üldanalüüsi mikroskoopiline uurimine viiakse läbi natiivse preparaadina slaididel pimendatud mikroskoobiväljas või langetatud kondensaatoriga. Raskesti eristatavate rakkude olemasolul võib kasutada supravitaalseid plekke (Sternheimeri plekk, vt lõik 4.5.1.).

Lisaks visuaalsele mikroskoopilisele uuringule kasutatakse uuringut automaatsete ja poolautomaatsete analüsaatorite abil.

3.6.3. Uriini setete valmistamine ja preparaatide ettevalmistamine mikroskoopiliseks uuringuks:

Labor peab kinnitama uriinisette valmistamise ja preparaadi mikroskoopiliseks uuringuks ettevalmistamise korra ning mikroskoopilise uuringu enda läbiviimise korra vastavalt standardile. Iga inimene peab läbima analüüsi kõik etapid ühtemoodi ja hindama sette mikroskoopilisi elemente, kasutades samu tuvastamise kriteeriume. Tsentrifuugitava uriini maht tuleks valida igas laboris ja kasutada seda järjepidevalt, nt 10 ml; kui mingil juhul kasutatakse väiksemaid koguseid (näiteks pediaatrias, neonatoloogias), märgitakse see järelduses.

Umbes 10 ml hommikust uriinist asetatakse pärast põhjalikku segamist tsentrifuugitorusse. Tsentrifuugimise nurkkiirus sõltub tsentrifuugi raadiusest. Kasutades 17-18 cm raadiusega tsentrifuugi (näiteks OPN 1 jms), tsentrifuugitakse 10 minuti jooksul nurkkiirusel 1500 p/min. Erineva raadiusega tsentrifuugi kasutamisel tsentrifuugitakse uriini 400 G juures samuti 10 minutit. Rootori pöörlemise nurkkiirus p/min arvutatakse kas valemi järgi või määratakse Dole'i ​​ja Kotziase nomogrammi järgi.

MÄRKUS G on suhteline tsentrifugaalkiirendus, mis sõltub tsentrifuugi raadiusest. Kaasaegsete tsentrifuugide juhised näitavad raadiust ja tsentrifugaalkiirenduse nurkkiiruseks teisendamise valemit. Pakutakse välja järgmine teisendusvalem: rpm = [√(G/r x 1,118)] x 1000, kus: G - suhteline tsentrifugaalkiirendus, r - tsentrifuugi raadius mm.

Mõned tsentrifuugid muudavad tsentrifugaalkiirenduse automaatselt nurkkiiruseks.

Seejärel toru kiirelt kallutades tühjendatakse supernatant uriin (supernatant), jättes alles ainult sade, misjärel kantakse 1 tilk sadet (umbes 40 μl) sama Pasteuri pipetiga klaasklaasile ja kaetakse katteklaasiga. . Katteklaas peaks katma sette täielikult ilma mullideta. Liigse vedeliku korral muutub preparaat mitmekihiliseks, mis muudab mikroskoopilise uurimise keeruliseks. Väikese koguse uriiniga, näiteks sisse imikud, tsentrifuugige kogu pärast analüüsi jäänud uriin diagnostikaribadele, tühjendage supernatant ja jätke alles ainult sete.

Slaidiplaatide kasutamine alusklaaside ja katteklaaside asemel loob mikroskoopia jaoks standardsema keskkonna.

Uriini settepreparaatide valmistamise standardiseerimine võimaldab saada võrreldavaid tulemusi mikroskoopilisel uurimisel erinevates laborites.

3.6.4 Uriini setete natiivse preparaadi mikroskoopiline uurimine.

Preparaadi uurimine algab väikese suurendamisega (ca x8 või x10, vol. x10) üldiseks ülevaateks ja üksikasjalikum preparaadi uuring koos korrastatud ja korrastamata sette elementide kvantitatiivse hindamisega viiakse läbi kl. suur suurendus (ca x8 või x10, vol. x 40) . Kui setteelemente leidub igas vaadeldavas vaateväljas, siis kvantitatiivset hinnangut väljendatakse nende arvuga vaateväljas, kusjuures väike kogus elemendid, kui neid ei leidu igas vaateväljas, - arvu järgi preparaadis (preparaadis sisalduvat arvu hinnatakse väikese suurendusega).

Eristada organiseeritud ja korrastamata setteid.

3.6.4.1. Organiseeritud uriini sete.

Organiseeritud uriinisetetes eristatakse kolme tüüpi epiteeli (lamerakujuline, siirde- ja neerurakke), erütrotsüüte, leukotsüüte, silindreid, seeni ja baktereid. Kasvajarakud on samuti osa korrastatud uriini settest.

lame epiteel. Meestel satub lameepiteel uriini ainult ureetra alumisest kolmandikust ja uriiniga terved mehed teda ei esine peaaegu kunagi. Naistel satub lameepiteel uriini kusitist ja tupest, seega esineb seda peaaegu alati naiste uriinis. Lameepiteel on suured hulknurksed või ümarad väikese tuumaga rakud, mis ei ole värvitud ega sisalda terasid ega lisandeid. Tüdrukud kuni puberteet ja menopausis naistel on tupe seintelt langenud lameepiteel väiksem, selle tuum on suurem, mis viib mõnikord mikroskoopia vigadeni. Lameepiteel paikneb üksikute rakkude või kihtidena.

Märkus 1 – B kuseteede sete rakud leitakse peaaegu alati lameepiteel ettevalmistuses olevast vallalisest vaateväljas. diagnostiline väärtus lameepiteelirakkudel ei ole.

üleminekuepiteel. Üleminekuepiteelirakud sisenevad uriini neeruvaagnast, kusejuhadest, põiest, kusiti. Epiteelirakud on 3-6 korda suuremad kui leukotsüüdid ja neid iseloomustab väljendunud polümorfism. AT erinevad osakonnad kuseteede üleminekuepiteel erineb suuruse, raku kuju, tuumade arvu poolest. Niisiis on põie üleminekuepiteeli rakud suured ümarad rakud, mis sisaldavad 1 kuni 3 või enam tuuma. Ühised omadused on tsütoplasma värvumine kollakaks, mis on tingitud kokkupuutest uriini pigmentidega ja peeneteralisuse olemasolust. Tsütoplasmas on vakuoolide ja rasvatilkade ilmumine võimalik.

MÄRKUS 2 Tervel inimesel on preparaadis üksikud rakud. Täheldatakse üleminekuepiteeli sisalduse suurenemist põletikulised haigused kuseteede, eesnäärme, joobeseisundiga mitmesugused etioloogiad. Avastamisel suur hulküleminekuepiteel, mida diagnoos ei kinnita, on soovitatav läbi viia tsütoloogiline uuring.

neeru epiteel. Neerude epiteel siseneb uriini nefronite tuubulitest. Morfoloogiliselt esindab see väikseid rakke, mille läbimõõt on 1,5–2 korda suurem kui leukotsüüdid, ebakorrapäraselt ümarad, nelinurksed või ovaalsed, üsna suure tuumaga. Kuna epiteel puutub uriini pigmentidega kaua kokku, on see värvitud erinevates kollase toonides. Neeruepiteeli rakkudes ekspresseeritakse degeneratsioonielemente, mis avalduvad jämedateralisuses (valgu degeneratsioon), mis sageli katab tuuma, vakuoolide või rasvatilkade olemasolu. Neeru epiteeli rakud on paigutatud rühmadesse, ahelatesse või kompleksidesse. Bilirubiini sisaldavas uriinis neeruepiteelirakud paisuvad ja näivad olevat suuremad, ümaramad ja bilirubiiniga määrdunud.

Kõige tavalisemad laboratoorsed vead on seotud neeruepiteeli tuvastamisega. Kui uriini setterakke on raske eristada, on soovitatav kasutada supravitaalset värvimist, mis võimaldab uriini setterakke eristada.

MÄRKUS 3 Neeruepiteel ilmneb tuubulite kahjustuse tagajärjel neeruhaiguste korral, erinevat tüüpi mürgistus, sealhulgas ravimid ja toksiinid, samuti pärast anesteesiat. Neeruepiteeli rasvade degeneratsioon näitab kahjustuse tõsidust.

Leukotsüüdid. Tervete inimeste uriinis leitakse peaaegu alati leukotsüüte. Need on väikesed, ümmargused, värvitud või hallid rakud, 1,5-2 korda suuremad kui erütrotsüüdid. Reeglina esindavad leukotsüüdid uriinis segmenteeritud tuumaneutrofiilid (95%), harvemini lümfotsüüdid või eosinofiilid. Leukotsüütide kõrge sisalduse tuvastamine bakteriuuria taustal viitab püuuriale (mäda uriinis). Preparaadis võivad leukotsüüdid paikneda eraldi või klastritena. Klastrite olemasolu tuleb märkida õppevormile.

Märkus 4 – Leukotsüütide arv sõltub soost ja vanusest: poistel enne puberteeti ei pruugi neid esineda, täiskasvanutel leitakse vaateväljas 0-3 leukotsüüti.

Märkus 5 - Leukotsüütide sisaldus uriinis suureneb nakkusliku ja põletikulise iseloomuga neeru- ja kuseteede haiguste korral.

MÄRKUS 6 Madala suhtelise tihedusega uriinis võivad leukotsüüdid paisuda ja tugevalt aluselises uriinis võivad need hävida.

Erütrotsüüdid. Erütrotsüüdid on kuju poolest sarnased kollakasroheliste ketastega, sisaldavad hemoglobiini (muutumata punaseid vereliblesid). Hemoglobiini kaotanud punased verelibled on rõngakujulised (muutunud punased verelibled). Erütrotsüüdid satuvad uriini neerudest, kuseteedest ja suguelunditest. Erütrotsüütide renaalne päritolu kinnitab erütrotsüütide kipsi olemasolu.

Märkus 7 – tervete inimeste uriinis on üksikute erütrotsüütide esinemine preparaadis lubatud. Muutunud punaseid vereliblesid leidub happelises uriinis. Erütrotsüütide jagunemine muutunud ja muutumatuteks ei ole hematuria allika probleemi lahendamisel esmatähtis. Tugevalt aluselises uriinis hävivad erütrotsüüdid. Suure hulga muutunud punaste vereliblede korral uriinis saab tuvastada vaba hemoglobiini.

MÄRKUS 8 Erütrotsüütide kuju sõltub uriini osmolaalsusest. Madala suhtelise tihedusega uriinis suureneb erütrotsüütide läbimõõt, mõnel juhul võib tekkida hemolüüs. uriinis koos kõrge tihedusega erütrotsüüdid vähenevad, omandavad tähtkuju.

Märkus 9 – uriini erütrotsüüdid tuleks eristada pärmi eostest ning ümaratest ja ovaalsetest oksalaadikristallidest. Seeneeosed on erinevalt erütrotsüütidest sagedamini ovaalse kujuga, murravad valgust teravamalt, on sinaka värvusega ja pungavad. Munakujulised oksalaadid on tavaliselt, kuigi mitte alati, erineva suurusega ja murravad valgust järsult. Sademe valmistamisele lisamine 30% äädikhape viib erütrotsüütide hemolüüsini, jättes seened ja kaltsiumoksalaadi kristallid muutumatuks.

MÄRKUS 10 - Hematuuriat saab tuvastada neeru parenhüümi kahjustustega, raske füüsilise koormuse korral, kuseteede kahjustustega, neerukivitõbi, neoplastiliste protsessidega, düsmetaboolse nefropaatiaga ja kaudse toimega antikoagulantide üleannustamisega.

Silindrid. Silindrid on neerutuubulite valgu- ja rakukihid. Iga silindri keskmes on valk, mis toimib kleepuva materjalina. Silindrites olevat valku esindab hüaliinitaoline mass ja stagnatsiooni ajal on see vahajas.

Silindreid on järgmist tüüpi: hüaliin-, granuleeritud, vahajas, epiteel-, erütrotsüüt-, pigment-, leukotsüüdid.

Märkus 11. Silindrite moodustamiseks on vaja jälgida järgmisi tingimusi: valgu esinemine primaarses uriinis, primaarse uriini happeline reaktsioon, uriini väljavoolu või stagnatsiooni rikkumine, tuubulite verevarustuse rikkumine. Silindreid leidub happelises uriinis. Valud lahustuvad leeliselises uriinis.

Hüaliinsilindrid on õrnade kontuuridega, läbipaistvad ja eredas valguses vaevu nähtavad. Pinnal võib esineda kerget teralisust amorfsed soolad või rakujäätmed. Moodustatud volditud valgust.

Märkus 12 – hüaliinkiipide ilmumine viitab proteinuuria tekkele, glomerulaarkapillaaride suurenenud läbilaskvusele. Terve inimese uriinis võib preparaadis leida üksikuid hüaliinseid silindreid.

Granuleeritud silindrid on teravamate kontuuridega ja koosnevad tihedast granuleeritud massist. kollakas värvus, tekivad neeruepiteelirakkude lagunemisel granulaarse valgu degeneratsiooni seisundis.

Vahasilindritel on teravalt piiritletud kontuurid, tihe jämedateraline struktuur, iseloomulikud praod ja purunemised ning kollane või kergelt kollakas värvus. Need moodustuvad tihendatud hüaliin- ja granuleeritud silindritest nende tuubulites hoidmise ajal. Vahakujuliste silindrite olemasolu viitab tõsisele pikaajalisele neerukahjustusele.

Epiteeli kips on selge ebaühtlased kontuurid ja koosnevad neeruepiteeli rakkudest, mis on tihedalt paigutatud hüaliini alusel.

Pigmenteeritud kipsi võib leida hemoglobinuuria ja müoglobinuuria korral; Pruun värv, on sarnased graanulitega.

Kollaka värvusega erütrotsüütide silindrid koosnevad erütrotsüütide massist, moodustuvad neeruhematuuriaga.

Leukotsüütide kips halli värvi moodustuvad leukotsüütide massist, neid leidub neerudes mädasetes protsessides.

Märkus 13 – Lisaks valkudest ja rakkudest moodustunud tõelistele silindritele leidub uriinisetetes mõnikord ka valesilindreid – silindrilisi moodustisi amorfsetest sooladest, millel pole praktilist tähtsust. Need moodustised lahustuvad, kui ravimit kuumutatakse või lisatakse happelisele uriinile tilk 10% leelist või 30% äädikhapet aluseliseks.

MÄRKUS 14 – Silindruria on neeru parenhüümi kahjustuse sümptom: hüaliinkiibid kinnitavad neeruproteinuuriat ning leukotsüütide ja erütrotsüütide kihid leukotsütuuria ja hematuuria neerude päritolu.

3.6.4.2. Uriini setetes võib leida seente blastospoore. perekond Candida eristada erütrotsüütidest. Erinevalt erütrotsüütidest on seenepunga eosed sinaka varjundiga ja murduvad valgust teravamalt. Tilga 30% äädikhappe lisamine lüüsib erütrotsüüte, jättes seene eosed muutumatuks.

3.6.4.3. Organiseerimata uriini sete.

Organiseerimata uriinisete on ühendid, mis on sadestunud kristallide või amorfse massina. Sette olemus oleneb uriini kolloidsest olekust, pH väärtusest ja veel mõnedest teguritest.

Happelises uriinis on: kusihape, uraatid, happeline uraat naatriumkaltsiumsulfaat, hippurihape.

Happelises, neutraalses ja aluselises uriinis on: happeline ammooniumuraat, kaltsiumoksalaat,

Amorfseid fosfaate leidub neutraalses ja aluselises uriinis.

Aluseline uriin sisaldab: kaltsiumkarbonaati, magneesiumfosfaati,

Kergelt happelises, neutraalses ja aluselises uriinis on: magneesiumammooniumfosfaat, kaltsiumfosfaat.

Patoloogias leitud aminohapete ja muude ühendite kristallid:

Türosiin

kolesterool,

bilirubiin,

hemosideriin,

hematoidiin,

Meditsiinilised kristallid.

3.6.5. Supravitaalselt värvitud uriinisetete mikroskoopiline uurimine.

Supravitaalset värvimist kasutatakse siis, kui rakulisi elemente ja silindreid on raske eristada.

Sternheimeri peitsi kasutatakse supravitaalseks värvimiseks.

Saadaval on valmis reaktiivide komplekt uriinisetete värvimiseks Sternheimeri järgi, mis koosneb kahest värvainest. Töölahus valmistatakse kahe võrdse osa segamisel.

Definitsiooni edenemine. Tsentrifuugige värsket hommikust uriini. Lisage 1 tilk reaktiivi 0,5 ml sademele, segage ja inkubeerige 5 minutit. Seejärel asetatakse tilk värvilist sadet klaasklaasile, kaetakse katteklaasiga (või täidetakse slaidiplaadi kambrisse) ja uuritakse mikroskoobi all. Rakkude tuumad värvitakse Sinine värv, tsütoplasma - roosa, hüaliinsed silindrid - sinine, vahajas - helepunane, teraline - pruun.

3.7. Automatiseeritud uriinianalüüs

Uriini automaatne analüüs viiakse läbi seadmetel, mis on ette nähtud uriini keemilise analüüsi ja mikroskoopiliseks uurimiseks. Need seadmed suudavad uriini setet kvantitatiivselt analüüsida.

Seadme tööpõhimõte põhineb õhukese kihi voolumikroskoopial, määrdunud uriini vaatamine toimub videosüsteemi ja kiire pildiprotsessorsüsteemi abil. Süsteem klassifitseerib leitud elemendid automaatselt ja tagab kõrge reprodutseeritavuse.

Teist tüüpi instrument tsentrifuugib proovi katseklaasides, mis on spetsiaalselt kohandatud mikroskoobi all vaatamiseks. On süsteeme, mis lihtsustavad proovi ettevalmistamist või vähendavad vajalikku mahtu. Kõik need seadmed kasutavad erinevaid metoodikaid, kuid kõik need sorteerivad proove ja aitavad vähendada uriiniproovide käsitsi käsitsemist.

Poolautomaatseid ja täisautomaatseid reaktiiviribade lugejaid on kirjeldatud punktis 4.4.3.

4. Uriinianalüüsi tulemuste registreerimine

Iga laboritöötaja peaks tulemuste registreerimiseks kasutama samu vorme (testitulemuste vorme). Vorm peab sisaldama labori ja meditsiiniorganisatsiooni nime; patsiendi tuvastamiseks piisav teave patsiendi kohta; pealkiri bioloogiline materjal ja kõik uuritud näitajad; proovi kättesaamise kuupäev ja vajaduse korral vastuvõtuaeg; uurimistulemused; võrdlusvahemikud; uuringu läbi viinud töötaja nimi ja allkiri. Tulemuste väljastamise kord tuleb määrata juhi poolt kinnitatud juhendiga meditsiiniline organisatsioon. Kõik uriinianalüüsi tegemisest keeldumised tuleb samuti protokollida (koos keeldumise põhjusega).

5 Uriinianalüüsi tehnoloogia toimivuse kvaliteedi tagamine

5.1 Kvaliteedi tagamise programmid

Kvaliteedi tagamise programmid hõlmavad protseduuri kõigi aspektide järjepidevat jälgimist, et tagada piisav kõrgeid võimalusi diagnoosimine ja patsiendi seisundi jälgimine. Kvaliteedi tagamise programmid peaksid hõlmama kõiki tööetappe ja looma seosed protsessi kõigi komponentide (patsient, laboratoorium, arst) vahel. Laboratoorsete uuringute kvaliteedikontrolli läbiviimine, mis seisneb kontrollmaterjalide testimises (laborisisene kvaliteedikontroll ja osalemine välishindamises), on vaid üks kvaliteedi tagamise aspekt. Kontroll on vajalik ka proovide kogumise, ladustamise, kohaletoimetamise, käsitsi töötlemise, registreerimise ja dokumentide väljastamise etapis. Kontrollimist vajab ka personali tehniline kompetents, pidev haridustee jätkamine. Kõigi kontrollitoimingute edukaks läbiviimiseks on vaja järgida standardis GOST R ISO 15189-2006 "Meditsiinilaborid – kvaliteedi- ja pädevusnõuded" sätestatud reegleid. Selle standardi nõuete kohaselt koostab labor "Kvaliteedikäsiraamatu", mis peaks kajastama kõiki kvaliteedi tagamise tegevusi.

5.2 Kontrollitoimingute arvestuse pidamine

Kontrolli registreerimine peaks toimuma kõigil tasanditel: eelanalüütiline, analüütiline ja järelanalüütiline, iga etapi jaoks tuleks välja töötada ja dokumenteerida kõigi protseduuride läbiviimise reeglid.

Kliiniliste osakondade jaoks tuleks välja töötada uuringutaotluse vorm, mis sisaldab vastuvõtukuupäeva ja proovide võtmist, patsiendi identifitseerimise teavet, diagnoosi, ravimite teavet või diagnostilised protseduurid kui nad saavad mõjutada uuringu tulemusi.

Materjali võtvatele meditsiinitöötajatele tuleks välja töötada juhend, mis sisaldab patsiendi ettevalmistamise tingimusi ja biomaterjali võtmise korda. Juhend peaks sisaldama näidiste kohaletoimetamise eeskirju, sealhulgas proovide säilitamise tingimusi ja tähtaegu ning ohutu transportimise eeskirju. Patsientide jaoks, kes koguvad materjali iseseisvalt, koostatakse memod.

Laboripersonali jaoks tuleks määratleda proovide vastuvõtmise ja vastuvõtmisest keeldumise kriteeriumid (punkt 5.3.), Nõuded proovide registreerimisele, töötlemisele, märgistamisele ja proovi enne analüüsi säilitamisele. Analüütiline etapp viiakse läbi vastavalt uurimismeetoditele (vt p 8.3.). Analüütijärgses etapis on vaja välja töötada analüüsitulemuste vastuvõetavuse hindamise reeglid, mis peaksid sisaldama analüütilist usaldusväärsust vastavalt laborisisese kvaliteedikontrolli andmetele, ravimite võimaliku interferentsi hindamist, tulemuste võrdlemist võrdlusintervalliga, kontrollimist. registreerimise täpsusest. Tulemuste väljastamise vorm tuleb kooskõlastada asutusega ja kooskõlastada raviosakondadega.

Registreerimine peab hõlmama ka kontrollmaterjale ja instrumendi töövõime hindamist. Igas laboris peavad olema välja töötatud ja trükitud juhised vigade tuvastamiseks ja parandamiseks, tulemuste, mis jäävad väljapoole kontrollpiire.

Reaktiiviribade registreerimine päevikusse või arvutisse peab olema töökohal kättesaadav ja see peab sisaldama:

reaktiiviribade komplekti number ja aegumiskuupäev;

ribadega konteineri avamise kuupäev (see teave tuleks märkida ka konteinerile);

Kõik patsiendi ja kvaliteedikontrolli tulemused:

Proovide võtmise ja laborisse lubamise kuupäev ja kellaaeg:

Uuringut teostava töötaja isikuandmed.

5.3 Kasutatud laboriprotseduuride juhised

Laboratoorsete uuringute läbiviimise metoodika peaks olema dokumenteeritud ja töökohal kättesaadav. Protseduur peaks põhinema kasutatavate seadmete ja/või reaktiivikomplektide juhistel, juhised või muud aastal kinnitatud dokumendid õigel ajal. Meetodi kirjeldus peaks sisaldama järgmist: meetodi põhimõte, kasutatud reaktiivid ja vahendid, uuringu kulg, meetodi analüütilised omadused ja kalibreerimisprotseduurid. Lisaks peab kirjeldus sisaldama järgmist teavet:

proovide kogumise ja transpordi protseduur;

uriiniproovide vastuvõtmise või tagasilükkamise kriteeriumid (võttes arvesse proovi säilitamise aega pärast kogumist, säilitusainete kasutamist, piisav uriin uurimiseks jne);

Teave kontrollmaterjalide kohta; kvaliteedikontrolli metoodika;

Võrdlusvahemikud;

Kinnitav uuring;

Tulemuste registreerimise meetod;

Katsematerjali bioloogilise ohuga seotud ettevaatusabinõud.

Valepositiivsete ja valenegatiivsete tulemuste põhjused.

5.4 Materjalide ja seadmete kvaliteedikontroll

Materjalide ja seadmete kvaliteedikontroll hõlmab:

reaktiivide ja diagnostikaribade õige ladustamine,

Reaktiivide ja diagnostiliste testribade aegumistähtaegade järgimine, mis takistab riknenud või aegunud reaktiivide kasutamist ja on kvaliteedi tagamise oluline komponent;

Seadme kasutusjuhiste olemasolu töökohal;

Teenuse hoolduse ja seadmete remondi registreerimise logide olemasolu.

5.5 Uriinianalüüsi laborisisene kvaliteedikontroll

Laboriuuringute kvaliteedikontrolli on kahte peamist tüüpi: laborisisene kontroll ja väline kvaliteedihindamine.

Laborisisene kontroll on laboris saadud tulemuste täpsuse igapäevase jälgimise süsteem.

5.5.1.Uriini keemiliste uuringute kvaliteedikontroll.

Diagnostiliste testribade abil keemilise analüüsi jaoks on vaja kontrollida riba kõiki komponente kahel erinevad tasemed et tagada tulemuste usaldusväärsus. Laboratoorseks kvaliteedikontrolliks kasutatakse tervetelt inimestelt võetud uriiniproove, patsientide normaalseid ja patoloogilisi uriiniproove. Kui kaubanduslikud mitmekomponendilised kontrollmaterjalid on saadaval, viiakse laborisisene kvaliteedikontroll läbi nende abil.

Avamisel tuleks läbi viia kvaliteedikontroll uus pakend diagnostiliste ribadega. Testribade vahetamisel peaksite hoolikalt uurima tootja juhiseid, kuna meetodid võivad inimestel erineda. erinevad tootjad, mis võib mõjutada värvireaktsiooni kujunemise aega ja tulemuste tõlgendamist. Erinevate tootjate ribasid ei tohi segada. Soovitatav on paralleelselt testida vanade ja uute ribade partiidega kontrollmaterjalidel või patsiendi uriiniproovidel.

N o t e - Erinevate tootjate ribasid kasutatakse ainult tulemuste visuaalseks hindamiseks. Uriinianalüsaatoritega töötades on vaja töötada ribadega konkreetne tootja või selle analüsaatori jaoks kohandatud ribad.

Kui testribade tulemused erinevad oodatud väärtustest, on vaja kinnitavaid teste, mis tuvastavad samu aineid suurema tundlikkuse või spetsiifilisusega, kuid kasutavad erinevaid reaktsioone, kuna korduvad reaktsioonid diagnostiliste ribadega ei ole kinnitustest. Näiteks valgu määramisel kasutatakse kinnitavat testi pürogalloolpunase või sulfosalitsüülhappega (lisa B)

5.5.2. Mikroskoopiliste uuringute kvaliteedikontroll.

Mikroskoopiliste uuringute kvaliteedikontrolli tuleks läbi viia iga päev, mil uuringuid tehakse. Reprodutseeritavuse kontrollimiseks võib kasutada paralleelsete uriiniproovide (duplikaatide) uuringut, mida soovitatakse silindrite, neeruepiteeli ja muude ühtsete elementide tuvastamiseks.

5.6 Väline kvaliteedihindamine

Väline kvaliteedihindamine on vajalik laboritulemuste õigsuse ja erinevates laborites saadud tulemuste võrreldavuse hindamiseks. Iga labor peab tingimata osalema välises kvaliteedihindamises. Spetsiaalsed organisatsioonid, kellel on litsents laboriuuringute kvaliteedi hindamiseks, sealhulgas üldiseks uriinianalüüsiks, jagavad perioodiliselt (mitu korda aastas) kontrollproove kindlaksmääratud keemiliste komponentide sisaldusega laborite vahel, et kontrollida natiivsete uriinisetete preparaatide õigsust või mikrogramme. Laborite saadud tulemused fikseeritakse ja järeldused saadetakse osalevatele laboritele uuringu õigsuse võrdlevaks hindamiseks. Tulemuste mitterahuldava hindamise korral peab labor võtma vajalikud meetmed oma vigade parandamiseks.

5.7 Spetsialistide täiendõpe

Analüüsi kvaliteedi tagamiseks peaks personali kvalifikatsioon vastama teostatava uuringu keerukusele. Kõik laboritöötajad peaksid perioodiliselt (üks kord viie aasta jooksul) läbima meditsiinitöötajate poolt läbiviidavate parendustsüklite koolituse. õppeasutused vastava litsentsiga. Iga spetsialist peab tegelema eneseharimisega. Laboris peaks olema kasutamiseks kättesaadav ajakohane kirjandus, sealhulgas perioodika laboridiagnostika ja atlaste kohta. Laborispetsialistid peavad osalema konverentsidel ja seminaridel.

Täielikku mikroskoopilist uuringut peaksid läbi viima ainult spetsiaalselt koolitatud töötajad, selliste spetsialistide puudumisel võib labor kasutada diagnostilisi testribasid, et saada poolkvantitatiivset teavet hematuuria, püuuria ja bakteriuuria kohta.

6. Nõuded töö- ja puhkerežiimile, toitumisele ja piirangud patsiendi ettevalmistamisel uriinianalüüsiks uriini kogumiseks

Mitmete keemiliste analüütide määramist hõlmava uriinianalüüsi tulemusi võivad mõjutada mitmesugused tegurid: füüsiline aktiivsus, ravimid jne, mistõttu tuleks patsiendi uriiniproovi võtmiseks ettevalmistamise tingimused standardida ja kirjeldada. üksikasjalikult vastavates patsiendi juhistes.

Vt lisa A.

7. Uriini kliinilise laboratoorse analüüsi tehnoloogia rakendamise tööjõukulud

Tabel 1 ─ Tööjõukulud UET-s kompleksi rakendamiseks meditsiiniteenus"Üldine uriinianalüüs"

LISA A

Uriiniproovide võtmine, ladustamis- ja kohaletoimetamistingimused (preanalüütiline etapp)

A.1 Sissejuhatus

Preanalüütiline etapp viiakse läbi meditsiiniosakonnas ja pärast biomaterjali tarnimist laborisse laboris endas. Arstid valmistavad ette taotlusi uuringuteks. Taotlusele tuleb märkida patsiendi täisnimi, sugu, vanus või sünniaasta, biomaterjali saamise viis (näiteks uriini võtmine kateetriga), uriini kogumise aeg, uriiniproovi osa (hommikune, juhuslik). ), tuleb märkida säilitusained (kui neid kasutatakse). kliiniline diagnoos, vähemalt diagnostilise eelduse tasemel ja analüüsi mõjutades ravimid. Diagnoosimise järjekorras või patsiendi poolt võetud tulemusi mõjutavate ravimite puudumine võib põhjustada tulemuste vale tõlgendamise ja vea diagnoosimisel. Patsiendi ettevalmistamise eest vastutavad osakonna õendustöötajad, õige kogumine materjal patsiendi enda poolt (vajadusel võetakse materjal kateetriga), proovi säilitamine rangelt määratletud aja jooksul pärast uriiniproovi kogumist ja laborisse toimetamine. Laboris tuleks kliiniliste osakondade meditsiinitöötajatele koostada kirjalikud juhendid uriiniproovide kogumiseks, säilitamiseks ja transportimiseks.

AT ambulatoorsed seaded patsient kogub uriini ise kodus ilma meditsiinitöötajate järelevalveta, seetõttu tuleb igas laboris koostada patsientidele spetsiaalsed juhised (memod), mida patsient peab materjali kogumise ühtsete tingimuste tagamiseks rangelt järgima. Soovitatav on anda patsiendile proovide kogumiseks spetsiaalne konteiner.

Preanalüütilise etapi jätkamine laboris seisneb saabuva biomaterjali vastuvõtmises ja registreerimises, vajadusel säilitamises kuni uuringuni, töötlemises ja uuringuks ettevalmistamises.

A.2 Patsiendi ettevalmistamine

Patsiendi ettevalmistamine uriini kogumiseks peaks olema standardiseeritud, mille puhul on vaja arvestada: söömise aega; puhkeaja kestus, kehaasend, samuti füüsiline aktiivsus enne võtmist (ortostaatilise ja sellega seotud ennetamine kehaline aktiivsus proteinuuria); mõne näitaja puhul - igapäevased biorütmid; ravimite ja toksiliste tegurite mõju. Uriini kogumine üldanalüüsiks toimub tavapärasel viisil toidurežiim, tühja kõhuga.

Ravimid, mis segavad teatud komponentide määramist (vt lisa B), tuleks tühistada; kui see ei ole võimalik, märgitakse nende ravimite tarbimine uuringu taotlusesse.

A.3 Uriiniproovide tüübid:

Juhuslik (juhuslik) valim;

Esimene hommikune proov;

Igapäevase uriini proov (24 tunni jooksul);

Proov vastu võetud erineval ajal (näiteks 10-12 tundi, 2-3 tundi).
Uriini analüüsiks kasutatakse tavaliselt hommikust või juhuslikku proovi.

A.4 Uriiniproovide kogumine uriinianalüüsi tehnoloogia jaoks

A.4.1 Juhusliku arvu kogumine uriiniproov

Juhusliku proovi võib koguda igal määramata ajal (kasutatakse näiteks keemiliste uuringute jaoks, kasutades diagnostilisi testribasid). Tavaliselt võetakse imikute uriinianalüüsiks pistelisi proove, kuna proovi ei ole võimalik koguda pika või rangelt määratletud aja jooksul, samuti erakorralistel patsientidel.

A.4.2 Hommikuse uriiniproovi võtmine

Üldanalüüsiks kogutakse tavaliselt hommikune uriinikogus.

Koguge keskmine portsjon uriini tühja kõhuga kohe pärast magamist (soovitav, et eelmine urineerimine oleks olnud hiljemalt kell 2 öösel) kuiva, puhta, kuid mitte steriilsesse nõusse, kus on vaba urineerimine. Enne uriini kogumist viiakse läbi väliste suguelundite põhjalik tualettruum. Voodihaigeid patsiente pestakse eelnevalt nõrga antiseptikumi lahusega, seejärel pühitakse kõhukelm suguelunditest kuni anus. Voodihaigetelt uriini kogumisel on vaja tagada, et veresoon paikneks kõhukelme kohal, et vältida päraku saastumist.

MÄRKUS 1 Kateetrit või põie punktsiooni tohib kasutada ainult siis äärmuslikud juhud- vastsündinutel, imikutel, eesnäärmehaigustega patsientidel, neuroloogilistel patsientidel, kes ei kontrolli urineerimist, mõnikord - mikrobioloogilised uuringud. Kaua seisnud kateetrist on võimatu uuringuks uriini võtta!

Märkus 2 - Imikutel ja väikelastel uurimiseks uriini kogumisel kasutatakse spetsiaalseid hüpoallergeense nahaliimiga kotte, mille tõttu uriinikogumiskott kleepub tihedalt nahale, anumat kontrollitakse iga 15 minuti järel, kogutud proov valatakse uriini kogumisnõusse, märgistatakse ja transporditakse.

Võimalusel tuleks uriin kohe koguda nõudesse, milles see laborisse toimetatakse. Soovitav on kasutada laia suuga anumat (anuma kaela läbimõõt on vähemalt 4 cm) mahuga 100 ml kaanega. Laeval peab olema lai alus et vältida juhuslikku pritsimist. Uriini on võimatu võtta anumast, pardist, potist, sest isegi pärast nende anumate loputamist võib seintele jääda fosfaatide sade, mis aitab kaasa värske uriini lagunemisele.

Märkus 3 ─ Kui kogu kogutud uriin ei tarnita laborisse (näiteks kui uriini kogus on üle 100 ml), tuleb see koguda kuiva, puhta anumasse ja valada anumasse, kuhu see toimetatakse laborisse, enne osa eraldamist põhjalikult segades, et moodustunud elemendid ja kristallid jaotuksid kogu mahus ühtlaselt.

Praegu toodetakse spetsiaalseid ühekordselt kasutatavaid uriini kogumiseks mõeldud anumaid mahuga 100 ml purunematust materjalist (plast), mis on inertne. koostisosad uriin, gradueeritud, tihedalt suletava kaanega. Anum ja kaas ei tohi sisaldada aineid, mis segavad keemiline määratlus. Sellised mahutid võivad olla osa uriini vaakumkogumissüsteemist (kui see on vajalik uriini kogumise steriilsuse säilitamiseks). Mahuti peab olema asjakohaselt märgistatud, pärast kogumist kinnitatakse anumale silt, mis peab sisaldama kõiki vajalikke andmeid patsiendi kohta ( täisnimi, identifitseerimisnumber, proovivõtu kuupäev ja kellaaeg, külmutus- või säilitusaine pealekandmine). Identifitseerimisvigade vältimiseks asetatakse silt anumale, mitte kaanele. Kogutud uriin toimetatakse võimalikult kiiresti laborisse. Kui on vaja transportida uriiniproove, tuleks kasutada spetsiaalseid transpordikonteinereid, mis peavad olema hästi suletud, kaas peab olema kergesti avatav.

Märkus 4 - pärast tsüstoskoopiat peaksid raviarstid määrama uriinianalüüsi mitte varem kui 5-7 päeva pärast.

A.5 Uriiniproovi säilitamine

Uriini pikaajaline säilitamine toatemperatuuril enne uuringut põhjustab füüsikaliste omaduste muutumist, rakkude hävimist ja bakterite kasvu. Üldanalüüsiks kogutud uriini võib hoida toatemperatuuril mitte rohkem kui 4 tundi, külmkapi kasutamine hoiab ära moodustunud elementide hävimise, kuid võib-olla mõjutab suhtelise tiheduse määramise tulemusi. Säilitusainete kasutamine on ebasoovitav, kuid lubatud, kui urineerimise ja uuringu vahel on rohkem kui 4 tundi (mitu tümoolikristalli 100 ml uriini kohta säilitab hästi vormitud elemente ega sega keemilisi uuringuid)

LISA B

(viide)

Uriini analüüs diagnostiliste testribade abil

Diagnostilised testribad ühe või mitme analüüdi määramiseks uriinis on mõeldud ühekordseks kasutamiseks (vt lõik 5.5 "Tehnoloogia uriini keemiliste testide tegemiseks, mis on osa üldisest uriinianalüüsist, kasutades diagnostilisi testribasid"). Laborid peaksid kasutama ainult testribasid, mis on lubatud kasutamiseks ettenähtud viisil ja enne pakendile trükitud aegumiskuupäeva.

Üldise uriinianalüüsi jaoks kasutatakse ribasid, mis sisaldavad 10 või 11 indikaatorit (punkt 4.5.3), askorbiinhape on 11. abinäitaja, kuna see mõjutab teiste testide tulemusi. Kombineeritud testribad on saadaval ka erieesmärkidel, näiteks ravi jälgimiseks. diabeet(glükoos ja ketoonkehad), neerude ja kuseteede haigused (leukotsüüdid, nitritid, pH, glükoos, valk ja veri), maksa ja sapiteede haigused (urobilinogeen ja bilirubiin). Neid ribasid hinnatakse ainult visuaalselt. Testribades kasutatavad keemilised meetodid põhinevad värvireaktsioonidel, mis muudavad riba katseala värvi. Visuaalne hindamine toimub värviskaalal. Uriini üldanalüüsiks mõeldud testribade tulemusi hinnatakse kvalitatiivselt või poolkvantitatiivselt peegeldava fotomeetri abil (vt punkt 4.4.3).

Meetodi põhimõte ja tundlikkus, mõju erinevaid tegureid, reaktsioonikeskkonna koostis, analüütide paigutuse järjestus erinevate tootjate ribade puhul võib erineda. Seetõttu peate enne ribadega töötamist hoolikalt läbi lugema juhised, pöörates tähelepanu igale määratud parameetrile. Uuringute läbiviimisel on vaja järgida tootja juhiseid. Enne ribadega töötamist tuleb uriin põhjalikult segada.

MÄRKUS Testide kirjelduses on märgitud ainult need mõjutegurid, mis on ühised enamiku ribade puhul. Testiala värvi kujunemist mõjutavad tegurid, valepositiivsete või valenegatiivsete tulemuste saamine konkreetse tootja ribade kasutamisel, on üksikasjalikult kirjeldatud juhistes.

B.1 Suhteline tihedus

katse põhimõte. Test peegeldab ioonide kontsentratsiooni uriinis. Katioonide juuresolekul eralduvad kompleksreaktiivi toimel prootonid, mis viib bromtümoolsinise indikaatori värvuse muutumiseni sinisest sinakasroheliseks kollaseks. Test ei võta arvesse uurea ja glükoosi sisaldust.

Värviskaala võimaldab teil saada suhtelise tiheduse tulemusi vahemikus 1000-1,030 intervalliga 0,005. Mõõtmistulemused korreleeruvad hästi refraktomeetriga saadud uriini tiheduse andmetega.

Leeliselises uriinis (pH 7 või rohkem) on tiheduse näitajad alahinnatud. Sel juhul tuleb ribadega mõõdetud tiheduse väärtusi korrigeerida vastavalt juhistes toodud soovitustele (tavaliselt lisage 0,005). Paljud analüsaatorid korrigeerivad tihedust automaatselt uriini kõrge pH väärtuse juures. Askorbiinhape alahindab ka tiheduse väärtust. Võimalik mõju lisatud meetodis on näidatud valkude, ketohapete ja glükoosi tihedus, mida tuleb enne tööle asumist hoolikalt uurida.

Märkus ─ Tiheduse mõõtmise intervalli piirang 1.000-1.030 ei võimalda alati seda meetodit kasutada Vajadusel saab tihedust mõõta uromeetriga.

Testi põhimõte: uriini reaktsioon määratakse universaalse indikaatori või indikaatorite segu abil. PH mõõtmistsoonis täheldatakse pH väärtuste 5-9 juures mitmeid selgeid värvimuutusi.

Tervete inimeste värske uriini pH on 5-6.

Vigade allikad. Proovi pikaajalisel säilitamisel tõuseb uriini pH väärtus, uriini reaktsioon muutub õhuga kokkupuutel ja bakterite arvukuse suurenemise tõttu aluselisemaks.

B.3 Valk

katse põhimõte. Valgu määramise katsetsoon multitesti ribal sisaldab puhvrit ja indikaatorit, mis muudab valgu juuresolekul värvi. Indikaatorina kasutatakse orgaanilist värvainet bromofenoolsinist või muid aineid, näiteks 3,3,5,5-tetraklorofenool-3,4,5,6-tetrabromosulfoftaleiini. Katsetsooni värvus sõltub indikaatorist.

Tundlikkuse piirid. Erinevate tootjate ribadel on erinev tundlikkus valgu suhtes. Standardne valgutundlikkus on 0,15 g/l või 0,3 g/l. Mõned tootjad toodavad valgu jaoks kõrge tundlikkusega ribasid - 0,1 g / l. Hoolimata asjaolust, et valgu kontsentratsioonil uriinis 0,06–0,08 g / l võib tekkida värvimuutus, peetakse seda valgu olemasoluks vähemalt riba tundlikkuseks. Tundlikkus ei sõltu registreerimismeetodist - instrumentaalsest või visuaalsest. Valgusisaldust, mis on väiksem kui riba tundlikkus, ei saa määrata, kuna puudub võrdlusskaala.

Spetsiifilisus. Indikaator on albumiini suhtes kõige tundlikum. Analüsaatori või võrdleva värviskaala abil saadud kontsentratsioon korreleerub hästi keemiliste meetoditega saadud albumiini kontsentratsiooniga uriinis. Globuliinide, Bens-Jonesi müeloomi valgu ja mõnede teiste valkude puhul on riba tundlikkus palju madalam, mistõttu neid valke määratakse vähem tõhusalt. Patsiendid, kes testivad valku, mis on allpool riba tundlikkust, või muid valke peale albumiini, võivad olla negatiivsed või valgu kontsentratsioon on märgatavalt madal. Seetõttu, kui kasutatakse diagnostilisi ribasid hulgimüeloomiga patsientide uriinianalüüsis, koos neerupatoloogia, samuti rasedatel naistel on soovitatav valgu kvalitatiivne määramine läbi viia 20% sulfosalitsüülhappega ja positiivsed proovid- kvantitatiivne ühe keemilise meetodi järgi.

Vigade allikad. Mõjutavad tegurid on näidatud ribade juhendis. Mõnes proovis võib vereasendaja polüvinüülpürrolidooni infusiooni ajal või pärast seda saada valepositiivseid tulemusi kiniinide või kinoliine sisaldavate ravimite võtmise ajal; kui on ülejääke desinfektsioonivahendid. Pärast fenasopüridiiniga töötlemist võib katsepiirkonnas täheldada punakat värvust.

Tulemuste hindamine sõltub riba tundlikkusest ja kasutatavast indikaatorist, mistõttu võib see erinevatel tootjatel erineda. Valgu esimene positiivne värvus vastab riba tundlikkusele, st esimesele positiivse tulemusega aknale värviskaalal või uriinianalüsaatori esimesele tuvastatavale väärtusele. Katse ei tuvasta madalamaid kontsentratsioone. Tulemust loeb analüsaator standardrežiimis. Ekspositsiooniaeg visuaalseks hindamiseks on näidatud analüüsiprotseduuris, tavaliselt vastab see 60 sekundile. Tundlikkuse tasemeni mitte jõudvat värvi hindab nii analüsaator kui ka visuaalselt “negatiivseks tulemuseks”, isegi kui see ei vasta rangelt “negatiivsele” väärtusele.

Tervetel inimestel võib ühe variandina tuvastada väikest kogust valku füsioloogilised väärtused. Proteiini dieedil olevatel patsientidel, pärast aurusauna ja naistel premenstruaalsel perioodil võib valke esineda väikestes kogustes.

B.4 Leukotsüüdid

Põhimõte . Leukotsüütide määramise katseala sisaldab indoksüeetrit, mis tuvastab granulotsüütide esteraasi. Indoksüül alustab reaktsiooni diasooniumisoolaga ja katseala muutub beežist lillaks.

Spetsiifilisus. Test tuvastab esteraasi aktiivsuse granulotsüütides ja makrofaagides, mis ilmnevad siis, kui krooniline põletik. Selle testiga saab tuvastada nii terveid kui ka hävitatud valgeid vereliblesid, mida mikroskoopilise uurimisega ei ole võimalik tuvastada. Eriti oluline on hävitatud leukotsüütide hindamine aluselises uriinis, kus erütrotsüüdid ja leukotsüüdid hävivad ning kipsised lahustuvad.

Vigade allikad. Mõjutegurid on toodud analüüsi metoodikas. Bilirubiini või nitrofuraanidega tugevalt määrdunud uriiniproovides võib uuritavas piirkonnas esineda mittespetsiifilist värvimuutust. Säilitusained võivad testitulemusi segada (näiteks formaliin ja formaldehüüd annavad valepositiivseid tulemusi).

Hinne. Esimene positiivne tulemus, mis on saadud analüsaatoril või värviskaalal, näitab kontsentratsiooni ligikaudu 10-25 leukotsüüdi µl kohta (10 000-25 000 leukotsüüti ml kohta). Lisaks jaotatakse tulemused vastavalt ribade omadustele. Analüsaatori või värviriba tulemused on keskmised väärtused, mis saadi loenduskambris meetodi kalibreerimisel.

Kui on kahtlaseid väärtusi, mida ei saa selgelt "negatiivseks" klassifitseerida, või analüüsi esimene positiivne tulemus standardrežiimis, on vaja katsetsooni uuesti hinnata. hilised kuupäevad, mis on täpsustatud analüüsimeetodis (tavaliselt 90 või 120 sek). Mis tahes hilisemaid värvimuutusi ei võeta arvesse. Leukotsüütide kõrge kontsentratsiooni korral (üle 500 leukotsüüdi µl kohta) ei saa leukotsüütide arvu tuvastada. Kui esmasel läbivaatusel leitakse patsiendi uriinis 10-25 leukotsüüti µl kohta ehk esimene positiivne tulemus, tuleb testi korrata värskelt kogutud uriiniproovis.

MÄRKUS Esteraas, nagu ka teised proteinaasid, lagundab valke. sidekoe, mistõttu organism toodab suurel hulgal erinevaid proteinaasi inhibiitoreid. Inhibiitorite tugev eritumine uriiniga võib põhjustada leukotsüütide testi negatiivse tulemuse. Kuseinhibiitorid võivad olla kas endogeense (moodustunud organismis) või eksogeense (nt ravimid) päritoluga.

B.5 Nitritid.

Nitritite määramine on varjatud bakteriuuria sõeltest, kuna enamik baktereid redutseerib nitraadi nitritiks. positiivne reaktsioon diagnostilised ribad tuvastatakse 90% juhtudest nakkushaigused kuseteede. Nitraatide redutseerimisvõimel on enamik põhjustavaid baktereid põletikulised protsessid neerudes ja kuseteede (coli, proteus, salmonella jne).

Põhimõte. Sulfoonamiidide aromaatsed amiinid reageerivad nitrititega happeline keskkond diasooniumsoola moodustumisega, mis indikaatoriga suhtlemisel muudab riba testtsooni värvi.

Testi tundlikkus vastab umbes 105 bakteri/ml sisaldusele, mis vastab 0,8 mg/l nitritile. Positiivse reaktsiooni tulemuseks on testitava ala värvuse muutumine valgest õrnroosani erkroosaks või punaseks.

Spetsiifilisus. Test on spetsiifiline nitrititele.

Vigade allikad. Mõjutegurid on toodud analüüsi metoodikas.

Valepositiivseid tulemusi võib saada siis, kui uriini hoitakse eksogeense bakterite kasvu tõttu pikka aega soojas kohas.

Nitraatide redutseerumisreaktsiooni toimumiseks nitrititeks peab ilmnema nitraatide esinemine uriinis, nitraate redutseerivate bakterite esinemine ja piisav ajavahemik nitraatide nitrititeks muundamiseks. Seetõttu võib nitriteid moodustavate bakterite juuresolekul saada valenegatiivseid tulemusi põies lühikese uriiniperioodi, nitraatide puudumise või vähese sisaldusega uriinis tühja kõhuga, köögiviljade puudumisel toidus. , või millal parenteraalne toitumine. Valenegatiivseid tulemusi võib seostada ka nitriteid konverteerivate mikroorganismide esinemisega uriinis. Valenegatiivse tulemuse korral võib leukotsüütide test olla bakteriaalse infektsiooni kinnituseks.

Saamise eest usaldusväärseid tulemusi kasutage kas hommikust või pärast 4-tunnist pausi kogutud uriini. Uuring tuleks läbi viia 4 tunni jooksul. Antibiootikumid ja askorbiinhappepreparaadid tuleb tühistada 3 päeva enne analüüsi.

Hinne. Igasugune värvimuutus roosaks loetakse positiivseks.

Värvusemuutuse puudumine ühel testil ei välista uriini nitrititaseme kõikumisest tingitud infektsiooni. Sellistel juhtudel on vajalik uuesti analüüs.

Märkus – teatud tüüpi bakterid (streptokokid, pseudomonaadid, neisseriad jne) ei oma nitraate redutseerivat võimet ja ei moodusta nitriteid.

B.6 Veri

Meetodi põhimõte. Peroksidaasi omadustega hemoglobiin ja müoglobiin lagundavad katsealasse immutatud substraadi, moodustades vesinikperoksiidi, mis laguneb veeks ja aatomi hapnik. Viimane oksüdeerib indikaatori (bensidiini või mõne muu derivaadi) värvilise aine moodustumisega. Värvi intensiivsus sõltub pigmendi kogusest ja reaktsioonitsooni värvus sõltub kasutatavast indikaatorist.

Uuring võimaldab teil tuvastada punaseid vereliblesid, hemoglobiini ja müoglobiini. Terved punased verelibled lüüsitakse, vabanenud hemoglobiin reageerib, põhjustades värvimuutuse. Hemoglobiin ja müoglobiin muudavad ühtlaselt kogu testitava ala värvi. Reaktsioon on tundlikum hemoglobiini ja müoglobiini kui erütrotsüütide suhtes.

Multitesti ribade testtsooni tundlikkus vere olemasolu suhtes uriinis sõltub ribade tüübist ja jääb vahemikku 5 kuni 20 erütrotsüüti/µl. Tundlikkuse piir on 5 erütrotsüüti µl kohta (5000/ml). Väga tundlike testide puhul on testi tundlikkus füsioloogilise hematuuria piiri lähedal. Rohkem tundlikkust ja avastamispiire on toodud juhistes.

Spetsiifilisus. Test on spetsiifiline hemoglobiini ja müoglobiini suhtes. Tulemust ei mõjuta teised raku komponendid.

Vigade allikad. Kõrge askorbiinhappe sisaldus, kõrge valgusisaldus ja punaste vereliblede hemolüüsi täielik puudumine võivad põhjustada valenegatiivseid või madalaid tulemusi. Viimasel juhul võib test olla negatiivne, kui uriini settes on erütrotsüüte.

Teatud tüüpi ribade puhul on reaktiivi piirkond immutatud jodaadi seguga, mis oksüdeerib askorbiinhapet, nii et isegi selle kõrge kontsentratsioon uriinis ei mõjuta tulemust.

Kloori sisaldavate oksüdeerivate ainete jäägid võivad anda valepositiivseid tulemusi. Mõjutegurid on täpsemalt välja toodud ribade juhendis.

Hinne. Värvilisel skaalal on eraldi hemoglobiini ja erütrotsüütide hindamistsoonid.

RBC-d: täpiline või kompaktne värv testribal näitab normaalseid RBC-sid. Seda tüüpi ribade abil saadud tulemuste tõlgendamiseks vajalikud kontsentratsioonivahemikud on toodud juhistes. Kell kõrge kontsentratsioon erütrotsüütide testimisalal võib olla ühtlane tumedat värvi, mille värv on väljaspool määratud väärtusi. Sel juhul on vaja proovi 10 või 100 korda lahjendada 0,9% naatriumkloriidi lahusega ja seejärel testi korrata.

Hemoglobiin. Uuritava ala homogeenne värvus näitab vaba hemoglobiini, lüüsitud või muutunud erütrotsüütide hemoglobiini ja müoglobiini olemasolu. Selle meetodi abil on võimatu eristada hemoglobiini ja müoglobiini. Seda tüüpi ribade abil saadud tulemuste tõlgendamiseks vajalikud kontsentratsioonivahemikud on toodud juhistes. Esimesest positiivsest tulemusest nõrgem värvumine viitab uuesti testimise vajadusele ja võib olla tingitud punaste vereliblede hemolüüsi puudumisest. Erütrotsüütide hemolüüs on värvusreaktsiooni toimumise vajalik tingimus, kuna erütrotsüütide sees olev hemoglobiin ei osale keemilises reaktsioonis. Erütrotsüütide osalise hemolüüsiga ilmneb samaaegselt difuusne ja täppvärvimine.

Võrdlus sellega mikroskoopiline uurimine mustand.

Kui võrrelda katsetulemusi setete mikroskoopilise uurimisega, tuleb arvestada järgmiste punktidega:

1. Riba määrab muutumatul kujul ja hemoglobiini osas muutunud ja hävinud erütrotsüüdid. Seetõttu saab leeliselise uriini analüüsimisel, milles erütrotsüüdid on hävinud ja neid ei ole võimalik mikroskoopiaga tuvastada, hemoglobiini abil tuvastada erütrotsüütide olemasolu.

2. Muutunud punaste vereliblede olemasolul näitab riba testtsoon hemoglobiini.

3. See meetod paljastab ainult erütrotsüüdid, mida tuleb mikroskoopias eristada blastospooridest ja munakujulistest oksalaatidest.

Mõningane lahknevus ribade ja mikroskoopia abil saadud tulemuste vahel võib olla tingitud uriini sette saamise standardtingimustest (tsentrifuugimisrežiim, sette uriini maht) ja preparaadi mikroskoopiaks ettevalmistamisest.

B.7 Glükoos

katse põhimõte. Glükoosi määramine põhineb spetsiifilisel glükoosoksüdaasi reaktsioonil. D-glükoos muundatakse glükoosoksüdaasi ensüümi osalusel glükoonhappeks, moodustades vesinikperoksiidi, mis peroksüdaasi juuresolekul oksüdeerib indikaatori, moodustades värvilise ühendi. Reaktsiooniriba värvus sõltub kasutatavast indikaatorist.

Meetodi tundlikkus. Ribade tundlikkus vastab reeglina 2-3 mmol/l ja ületab füsioloogilise kontsentratsiooni piire, mis jääb vahemikku 0,12-1,8 mmol/l. Kõrge tundlikkus ribad, ühelt poolt, võimaldab teil määrata isegi kerge glükosuuria koos suurel määral töökindlus, teisest küljest saadakse füsioloogilise glükoosikontsentratsiooni korral negatiivne tulemus. Kontsentratsiooni poolkvantitatiivne mõõtmine on sõltuvalt kasutatavatest ribadest vahemikus 2-3 kuni 55-60 mmol / l. Seega saab glükoosi kontsentratsiooni mõõta laias vahemikus. Täpsed väärtused juhendis on näidatud ribade tundlikkus ja mõõtmispiirid.

Vigade allikad. Vähenenud või negatiivsete tulemuste registreerimist võib täheldada, kui kõrge sisaldus askorbiinhape. Valepositiivsed tulemused võivad olla põhjustatud vesinikperoksiidi või kloori sisaldavate oksüdeerivate ainete jääkidest uriini kogumisanumas.

Hinne. Esimesele positiivsele tulemusele vastav kontsentratsioon ja määratud kontsentratsioonide intervallid sõltuvad ribade tüübist ja on näidatud juhistes.

B.8 Ketoonkehad

Põhimõte. Ketoonkehade määratlus põhineb legaalsel reaktsioonil. Atsetoäädikhape ja atsetoon reageerivad naatriumnitroprussiidiga aluseline keskkond lilla kompleksi moodustamiseks.

b-hüdroksüvõihape ei reageeri naatriumnitroprussiidiga.

Tundlikkus. Test on 10 korda tundlikum atsetoäädikhappe kui atsetooni suhtes. Atsetoäädikhappe tundlikkuse piirid on tavaliselt 0,5 mmol/l (5 mg/100 ml).

Vigade allikad. Kaptopriil (naatrium-2-merkaptoetaansulfonaat) ja teised vabu sulfhüdrüülrühmi sisaldavad ained võivad anda valepositiivseid tulemusi. Mõjutegurite loetelu on näidatud ribade juhendis.

Mõned ühendid, nagu fenüülketoonid ja ftaleiinid, põhjustavad punase värvuse teket, mis erineb lilla iseloomulik atsetoonile ja atsetoäädikhappele.

Hinne. Tervetel inimestel ei ületa Legali reaktsiooniga tuvastatud ketokehade kontsentratsioon 0,5 mmol / l. Ketoonkehade taseme tõus toob kaasa lilla värvuse. Värvi intensiivsus suureneb kontsentratsiooni suurenedes. Mõõtmispiirid ja tulemuste tõlgendamine vastavalt värviskaalale on toodud ribade juhendis.

B.9 Bilirubiin

Põhimõte. Test põhineb diasoreaktsioonil. Bilirubiini interakteerumisel diasooniumisoolaga happelises keskkonnas moodustub värviline kompleks, mille värvuse intensiivsus suureneb bilirubiini kontsentratsiooni suurenedes. Värvilise ühendi värvus sõltub kasutatavast indikaatorist.

Tundlikkus. Praktikas on bilirubiini tundlikkus umbes 9 µmol/l (0,5 mg/100 ml). Rohkem madal kontsentratsioon bilirubiini saab tuvastada suhteliselt väikese tõenäosusega.

Vigade allikad. Test võib olla valenegatiivne, kui seda esineb uriinis. suured hulgad askorbiinhape, nitrit või kusihappe, uriini pikaajalise säilitamisega valguses, nii et valgus põhjustab bilirubiini hävimise. Valepositiivseid tulemusi võivad põhjustada ravimid, mis värvivad uriini happelises keskkonnas punaseks või punaseks (fenasopüridiin) ja kõrge urobilinogeeni sisaldus.

Hinne. Mõõtmispiirid ja tulemuste tõlgendamine vastavalt värviskaalale on toodud ribade juhendis. Isegi kerge määrdumine on positiivne tulemus. Uriini komponendid, mis põhjustavad intensiivse kollase värvuse, võivad muuta pleki tooni.

B.10 Urobilinogeen

Põhimõte. Multitesti ribade urobilinogeeni määramine põhineb diasoreaktsioonil stabiilse diasooniumisoolaga happelises keskkonnas. Värvilise ühendi värvus sõltub kasutatavast indikaatorist. Värvi intensiivsus vastab urobilinogeeni kontsentratsioonile.

MÄRKUS Inimese uriinis võib esineda kahte bilirubiini (urobilinoidi) derivaati: sterkobilinogeen ja urobilinogeen. Terve inimene sisaldab sterkobilinogeeni. Maksahaiguste korral on urobilinogeeni muundamine pürroolideks häiritud ja see ilmneb uriinis. Kõrval keemiline struktuur mõlemad ühendid on väga lähedased, neid ei saa tavaliste keemiliste meetoditega eristada, mistõttu värvusreaktsiooni käigus ilmnevad mõlemad ühendid, kuid traditsiooniliselt nimetatakse diagnostilistel ribadel neid urobilinogeeniks.

Tundlikkus oleneb kasutatavatest ribadest ja on näidatud juhendis, samuti mõõtmispiirid. Kontsentratsioonide füsioloogiline piir on 5 kuni 17 µmol/l (1 mg/100 ml). Värvide võrdlus võimaldab eristada normi ja patoloogiat. Spetsiifilisus. Test põhineb urobilinogeeni spetsiifilisel reaktsioonil. Seda ei mõjuta teised diasoühenditega reageerivad ained, samuti Ehrlichi reaktsiooni segavad tegurid.

Test võimaldab eristada füsioloogilist ja patoloogilist urobilinogenuuriat, kuid seda ei saa kasutada tõestamiseks täielik puudumine urobilinogeen.

Vigade allikad. Valenegatiivseid tulemusi võib saada uriini pikaajalisel säilitamisel, eriti kokkupuutel päikesevalgus. Reaktsioon aeglustub suure koguse formaldehüüdi juuresolekul.

Teatud ravimitega, näiteks fenasopüridiiniga, võib saada valepositiivseid tulemusi. Mõjutegurid on täpsemalt välja toodud ribade juhendis. Suur kogus bilirubiini võib biliverdiini moodustumise tõttu põhjustada sinakasrohelist värvi.

Hinne. Mõõtmispiirid ja tulemuste tõlgendamine vastavalt värviskaalale on toodud ribade juhendis.

Rohkem kõrgel tasemel urobilinogeeni taset täheldatakse pärast süsivesikuterikka toidu söömist.

LISA B

Testribade abil saadud tulemuste kinnitamine muude meetoditega: suhtelise tiheduse määramine uromeetriga, valgu, glükoosi, bilirubiini ja urobilinogeeniga - keemiliste meetoditega

B.1 Uriini suhtelise tiheduse mõõtmine uromeetriga.

Suhtelise tiheduse mõõtmist uromeetriga peetakse võrdlusmeetodiks ja seda kasutatakse madala või kõrged väärtused tihedus, kui see määratakse testribade abil.

Suhteline tihedus on uriiniproovi massi ja sama temperatuuriga destilleeritud vee võrdse mahu massi suhe. Suhe on väljendatud arvväärtusi; normaalväärtused: 1,003 - 1,035. Uriini suhteline tihedus sõltub selles lahustunud ainete kontsentratsioonist (uurea, naatriumisoolad, valk, glükoos jne).

Märkus ─ Testribadega mõõtmisel ioniseerimata ained (glükoos, radioaktiivsed ained) tulemusi ei mõjuta, kuna mõõtmispõhimõte põhineb suhtelise tiheduse sõltuvusel ioonide kontsentratsioonist.

Suhtelise tiheduse määramiseks kasutatakse uromeetreid (kombineeritud hüdromeetreid), mille skaala on vahemikus 0,001 kuni 1,050. Uromeetri kasutamisel on vajalik, et see hõljuks anumas (silindris) ja ei puudutaks seinu, selleks on vaja üsna laia anumat ja suhteliselt palju uriini. Suhtelise tiheduse määramist uromeetriga mõjutab temperatuur, mille juures mõõtmine toimub. Uromeetrid on kalibreeritud rangelt mõõtmiseks teatud temperatuur(15°, 20°, 22°C), mis on seadmel näidatud. Iga kõrvalekalle sellest temperatuurist põhjustab muutuse mahus ja seega ka lahustunud aine kontsentratsioonis ja suhtelises tiheduses. Sellest kõrgemal temperatuuril suureneb uriini maht, väheneb kontsentratsioon ja suhteline tihedus, temperatuuri langus põhjustab tagasi efekt. Kui temperatuur muutub kolme kraadi võrra, muutub suhteline tihedus 0,001 võrra. Valgu ja glükoosi olemasolu suurendab suhtelist tihedust: iga 3 g/l valku annab tõusu 0,001, iga 10 g/l glükoosi - 0,004 võrra.

B.2 Valgu kontsentratsiooni mõõtmine uriinis keemiliste meetoditega.

Valgu kontsentratsiooni mõõtmine uriinis keemiliste meetoditega viiakse läbi supernatandis (supernatandis) pärast uriini tsentrifuugimist standardrežiimis (1500 pööret minutis 10 min).

B.2.1 Uriini valgu kontsentratsiooni mõõtmise standardmeetod on biureedimeetod, mis tuvastab polüpeptiidsidemed ja ei sõltu valgu aminohappelisest koostisest. Ta on koos sama tõhusus määrab albumiinid, globuliinid ja muud valgud. Meetodi madala tundlikkuse tõttu nõuab valgu määramine uriinis sadet ja valgu kontsentreerimist, mistõttu meetodit suure töömahukuse tõttu laboris praktiliselt ei kasutata. Keemiliste meetoditena on soovitatav uurida uriinis leiduvaid valke sulfosalitsüülhappe (SSA) ja pürogalloolpunase (PGK) abil.

B.2.2. Valgu kontsentratsiooni mõõtmine uriinis sulfosalitsüülhappega.

Meetodi põhimõte: kui uriini valk interakteerub CSC-ga, toimub valkude denaturatsioon ja sademete moodustumine, mis põhjustab lahuse hägusust. Hägususe aste on tinglikult võrdeline lahuse valgusisaldusega.

Valgu tuvastamine CCK-ga (kvalitatiivne proov).

Reaktiivid: 20% sulfosalitsüülhappe lahus.

Määramise käik: umbes 3 ml uriini supernatanti valatakse 2 katseklaasi (katse- ja tühiproov). Uuritavale proovile lisatakse 6-8 tilka reaktiivi. peal tume taust võrrelda eksperimentaalseid ja tühiproove. Hägusus katseproovis näitab valgu olemasolu, proov loetakse positiivseks.

MÄRKUS 1 Leeliselise reaktsiooni korral hapestatakse uuritav osa uriinist 2-3 tilga nõrga äädikhappega.

Valgu kvantitatiivne määramine CCK-ga.

Reaktiivid: 3% SSC lahus, 0,9% naatriumkloriidi lahus (soolalahus), 1% valgu kalibreerimislahus.

Varustus: fotomeeter, automaatpipetid, katseklaasid.

Määramise käik: lisada 3 ml 3% SSC-d 1 ml uriinile, segada ja inkubeerida 10 minutit. Inkubatsiooniaeg märgitakse esimesele proovile. Tühiproovina kasutatakse uriiniproovi. soolalahus. Tühiproov asetatakse iga patsiendi jaoks eraldi. Inkubatsiooniperioodi lõpus mõõdetakse uuritava proovi neeldumist pimekatse suhtes lainepikkusel 590–650 nm. Kontsentratsiooni määramine toimub vastavalt kalibreerimiskavale või vastavalt ajakavale koostatud tabelile.

Kalibreerimisskeem. Graafiku koostamiseks valmistage 1% valgu kalibreerimislahuse lahjendused soolalahusega lõppkontsentratsioonini 0,05; 0,1; 0,2; 0,5 ja 1 g/l.

Kõiki lahjendusi analüüsitakse samamoodi nagu uriiniproovi. Analüüsi tulemuste põhjal ehitatakse koordinaatidesse kalibreerimisgraafik: neeldumine (ordinaattelg), kontsentratsioon (abstsisstelg). Meetodi lineaarsus säilib kuni 1 g/l. Lineaarsuspiirist kõrgemate valgukontsentratsioonide korral lahjendatakse uriiniproov soolalahusega 5-10 korda ja mõõtmise tulemus korrutatakse lahjendusega.

Võrdluspiirid: 0,01-0,140 g/l, 0,05-0,08 g/ööpäevas. (autor, 1997).

MÄRKUS 2 Albumiini ja albumiini ja globuliini segust koosnevat valku võib kasutada kalibreerimisproovina. Segavalgu kasutamine standardina suurendab tulemuste usaldusväärsust. Kalibreerimisgraafiku koostamiseks on saadaval valmis valgu kalibreerimisproovide komplektid.

Märkus 3 – Venemaal toodetakse CCK-ga valgu kontsentratsiooni määramiseks valmis reaktiivide komplekte.

Vigade allikad. Valepositiivseid tulemusi võib saada joodi kontrastainete olemasolul uriinis, suures koguses penitsilliini ja sulfoonamiide ​​ning kusihappe kõrge kontsentratsiooni korral. Meetodi puudused hõlmavad sademe madalat stabiilsust, neeldumise keerulist mittelineaarset sõltuvust valgu kontsentratsioonist, olulisi erinevusi kalibraatori ja uriiniproovi valgu koostises, mitmete valkude mittetäielikku sadenemist analüüsitavas proovis, mis põhjustab alahinnatud tulemused. SSC test on atraktiivne ainult oma lihtsuse ja madala hinna poolest.

B.2.3 Valkude kvantifitseerimine pürogalloolpunase abil

Meetodi põhimõte: valgu sidumisel happelises keskkonnas orgaanilise värvainega pürogalloolpunane tekib värviline kompleks, mille värvuse intensiivsus on võrdeline valgusisaldusega proovis. Kompleks on vastupidav paljudele ühenditele, sealhulgas ravimitele, sooladele, alustele, hapetele.

Reaktiivid. Valgu määramiseks kasutatakse valmis reaktiivide komplekte, mida toodavad erinevad tootjad. valgu kalibreerimislahus on komplektis.

Varustus: fotomeeter, automaatsed pipetid.

Määramise käik on näidatud analüüsiprotseduuris. Neeldumise mõõtmine viiakse läbi lainepikkusel 600 nm. Neelduvus püsib stabiilsena mõõtmistemperatuuril 25 kuni 370 C vähemalt 30 minutit pärast mõõtmise lõppu. keemiline reaktsioon. Meetodi lineaarsus ulatub 4 g/l valgu kohta ja tundlikkus on 0,03-0,04 g/l. Meetodit iseloomustab tulemuste hea reprodutseeritavus, lihtsus ja teostamise lihtsus.

MÄRKUS 4 PGA-värvi ei sorbeerita küvettide seintele kuni valgukontsentratsioonini 5 g/l, seega kasutatakse seda meetodit valgukontsentratsiooni mõõtmiseks automaatsetel biokeemilistel analüsaatoritel.

Spetsiifilisus. Meetod on kõige tundlikum albumiini suhtes, kuid selle tundlikkus globuliini ja müeloomi valgu suhtes jääb albumiiniga võrreldes 70% piiresse. Segavalgu kasutamine kalibreerimisproovina vähendab võimalikku viga määramisel.

Vigade allikad. Võimalikud veaallikad ja mõjutegurid on toodud analüüsiprotseduuris. Uriinis sisalduvad ained annavad kokku umbes 2% vea.

B.3 Glükoosi määramine keemiliste meetoditega

Glükoosi määramiseks kasutatakse glükoosi oksüdaasi või heksokinaasi meetodeid.

Glükoosi oksüdaasi meetodi põhimõte: meetod põhineb glükoosi oksüdeerimisel glükoosoksüdaasi toimel vesinikperoksiidi moodustumisega, mis peroksidaasi toimel oksüdeerib ortotolidiini või mõnda muud ainet, näiteks fenoolftaleiini, moodustades värvuse, mille intensiivsust mõõdetakse fotomeetriliselt.

Glükoosi oksüdaasi meetodi läbiviimiseks on valmis reaktiivide komplektid, peate hoolikalt uurima juhiseid ja järgima neid täpselt.

Glükoosi kontsentratsiooni uriinis saab määrata ka heksokinaasi meetodil, kasutades valmis reaktiivikomplekte ja glükoosi analüsaatorit, mis sobib glükoosi kontsentratsiooni määramiseks uriinis.

Viitepiirangud:< 0,5 г/сутки (< 2,78 ммоль/сутки); 1-15 мг/100 мл (0,1 -0,8 ммоль/л), (по, 1997).

B.4 Bilirubiini tuvastamine uriinis (Fucheti kvalitatiivne test)

Meetodi põhimõte: test põhineb bilirubiini oksüdeerumisel biliverdiiniks raudkloriidi toimel, mis sisaldub Fouche'i reagendis, moodustades sinakasrohelise värvuse.

Reaktiivid: 15% baariumkloriidi lahus, Fouche'i reaktiiv (25 g trikloroäädikhapet lahustatakse 100 ml destilleeritud vees ja lisatakse 10 ml 10% raudkloriidi lahust).

Määramise käik: lisada 5 ml 15% baariumkloriidi lahust 10 ml uriinile, segada, filtreerida. Filtrile tilgutatakse 1-2 tilka Fouche'i reaktiivi. Bilirubiini juuresolekul ilmub filtrile rohekas või sinakasroheline laik. Aluseline uriin enne uuringut hapestatakse mõne tilga kontsentreeritud äädikhappega.

B.5 Urobilinogeeni tuvastamine uriinis (Neubaueri kvalitatiivne test). Meetodi põhimõte: test põhineb urobilinogeeni interaktsioonil para-dimetüülaminobensaldehüüdiga punase ühendi moodustumisel.

Reaktiivid: Ehrlichi reaktiiv: 2 g paradimetüülaminobensaldehüüdi lahustatakse 100 ml 20% vesinikkloriidhappe lahuses.

Määramise käik: 1 ml uriinile lisatakse 1 tilk Erlichi reaktiivi, aeg märgitakse. Uriini punane värvumine esimese 30 sekundi jooksul tähendab positiivset tulemust (urobilinogeeni suurenemist). Värvuse puudumine või selle areng 60 sekundi pärast näitab normaalset urobilinogeeni sisaldust.

Need segavad urobilinogeeni määramist: bilirubiin, porfobilinogeen, mõned ravimid (para-aminosalitsüülhape, sulfoonamiidid jne). Kui tuvastatakse bilirubiin, eemaldatakse see baariumkloriidiga sadestades ja sellele järgnevalt filtreerides, filtraadis tehakse urobilinogeeni test. Urobilinogeenist või porfobilinogeenist tingitud värvuse eristamiseks lisatakse uriini ja Ehrlichi reagendi segule võrdne kogus kloroformi, urobilinogeeni juuresolekul värvitakse kloroformikiht (alumine kiht), porfobilinogeeni juuresolekul ülemine kiht. vesikiht. Sulfoonamiidid ja para-aminosalitsüülhape annavad Ehrlichi reagendiga hägususe ja oranži värvuse, urobilinogeeni ekstraheeritakse petrooleumi või dietüüleeter ja testi korratakse eetri ekstraktiga.

Bibliograafia

1. GOST R 52905 -2007 (ISO 15190:2003) Ohutusnõuded.

2. "Instruktsioon nakkushaiguste leviku tõkestamiseks raviasutuste kliinilise diagnostika laborites töötamisel." Moskva, 1991.

3. "Meditsiiniasutuste jäätmete kogumise, ladustamise ja kõrvaldamise eeskiri." SanPiN 2.1.1.728-99., Moskva, 1999

4. GOST R 53079.4-2008 Meditsiinilabori tehnoloogiad. Kliiniliste laboratoorsete uuringute kvaliteedi tagamine. 4. osa Eelanalüütilise etapi läbiviimise reeglid.

5. GOST R ISO 15189 -2006 Meditsiinilaborid. Erinõuded kvaliteedile ja pädevusele.

Standardi kavandi koostasid:

, (MMA im.); (RSMU), (RMAPO); (RAMS-i järgi nime saanud RONTS).

Meie riigis traditsiooniliselt levinud nimetus "Üldine uriinianalüüs" tähistatakse välismaal terminiga "Urinaliz".