Как правильно сдавать мокроту на анализ. Взятие мокроты для бактериологического исследования Общий клинический анализ мокроты цель исследования

Бактериологическое исследование мокроты позволяет обнаружить возбудителей заболеваний легких. Гнойный, кровянистый комочек мокроты растирают между двумя предметными стеклами. Высохшие мазки фиксируют на огне, затем один окрашивают по Граму (см. Грама метод окраски), другой по Цилю - Нельсену. Окраска по Граму позволяет обнаружить грамположительные микробы - капсульный пневмококк (рис. 17), ; грамотрицательные - капсульная диплобацилла Фридлендера (рис. 18), палочка Пфейффера (рис. 19) и др. Микобактерии туберкулеза ищут в мазке, окрашенном но Цилю - Нельсену. На мазок накладывают кусочек фильтровальной бумаги, равный по площади мазку, наливают на него фуксин Циля (1 г основного фуксина растирают в ступке с несколькими каплями глицерина, затем с 10 мл 96% спирта и приливают к 90 мл 5% раствора фенола) и нагревают на нежарком пламени до появления паров. Бумажку сбрасывают, мазок опускают в 5-10% раствор (или 3% раствор в спирте) до обесцвечивания, хорошо промывают водой, докрашивают 20-30 сек. 0,5% раствором метиленового синего и промывают водой. Красные микобактерии хорошо видны (при иммерсионной системе) на голубом фоне препарата (рис. 20). В случае ненахождения микобактерии туберкулеза в мазке прибегают к методу их накопления - флотации. 10-15 мл мокроты помещают в бутылку с покатыми плечиками емкостью 250 мл, добавляют двойной объем 0,5% раствора и встряхивают до полного растворения мокроты. Прибавляют 100 мл дистиллированной воды и 1 мл (ксилола, бензина), встряхивают 10- 15 мин., доливают воды до горлышка и оставляют на 1-2 часа. Образовавшийся сверху сливкообразный слой отсасывают пипеткой с баллончиком и наносят по каплям на подогретое стекло, каждый раз на предыдущую подсохшую каплю. Препарат фиксируют и красят по Цилю - Нельсену. При отрицательном результате прибегают к посеву мокроты (бактериологическое исследование) или прививке ее животному (биологическое исследование). Посевы мокроты используют также для определения чувствительности ее флоры к антибиотикам.

Химическое исследование . Реакция мокроты на лакмус, как правило, слабощелочная, кислой она может стать при разложении мокроты и при примешивании желудочного содержимого (кислая отрыжка, желудочно-бронхиальный свищ). Белок в мокроте происходит из воспалительного экссудата и из распада лейкоцитов. Его мало (следы) в слизистой мокроте, много (1-2%) в мокроте при пневмонии, еще больше при отеке легкого. Для его определения к мокроте прибавляют двойное количество 3% раствора уксусной кислоты, энергично взбалтывают, фильтруют и в фильтрате определяют белок одним из обычных способов (см. Моча). Учитывают трехкратное разведение.

Бактериоскопическое, бактериологическое и биологическое исследования . Изучение микробной флоры мокроты необходимо для уточнения диагноза и для правильного выбора метода лечения. Этой цели служат бактериоскопическое, бактериологическое и биологическое исследования. Бактериоскопическое исследование достигает цели при относительно большом содержании микробов в мокроте. Для приготовления препаратов гнойный комочек переносят на наружную треть предметного стекла, накрывают такой же частью другого предметного стекла и растирают между ними. Мазкам дают высохнуть, фиксируют трехкратным проведением через пламя газовой горелки и окрашивают, один по Граму (см. Грама метод окраски), другой по Цилю - Нельсену (см. Туберкулез, лабораторные исследования). Окраска по Граму позволяет выявить грамположительный капсульный пневмококк, грамотрицательную капсульную пневмобациллу Фридлендера, палочку Пфейфера (цветн. рис. 5, 6 и 8), стафилококк, стрептококк, палочку Венсана, спириллы, катаральный микрококк и др. При исследовании отмечают количество найденных в поле зрения бактерий (мало, умеренно, много) и преобладание какого-либо вида. Способом Циля - Нельсена окрашивают кислотоупорные микробы, главным образом микобактерии туберкулеза. Микобактерии при этой окраске получаются красного цвета и хорошо видны на голубом фоне (цветн. рис. 1).

Несколько больший процент микобактерий туберкулеза выявляют при помощи люминесцентной микроскопии (см.). Светящиеся микобактерии хорошо видны при исследовании мазка с сухим объективом Х40 при окуляре ХЮ. Мазки приготовляют и фиксируют, как обычно, затем заливают на 5-10 мин. раствором красителя (аурамин 1: 1000, акридин оранжевый, смесь аурамина и родамина), промывают водой, обесцвечивают 5 мин. солянокислым спиртом, опять промывают водой и обрабатывают
раствором кислого фуксина (кислый фуксин 1 г, уксусная кислота 1 мл, дистиллированная вода 500 мл) или метиленового синего, которые гасят свечение фона. Препарат рассматривают в ультрафиолетовом свете (цветн. рис. 2).

Для облегчения поисков микобактерий туберкулеза прибегают к методам накопления, из которых чаще применяют метод флотации. 10-15 мл мокроты помещают в эрленмейеровскую колбу или бутылку с покатыми плечиками емкостью 250 мл, добавляют равный объем 0,5% раствора едкого натра и встряхивают смесь до гомогенизации ее. Прибавляют 50 мл дистиллированной воды и 1 мл толуола (ксилола, бензина), встряхивают, снова добавляют воду до половины бутылки и встряхивают 10-15 мин., затем доливают воду до горлышка и оставляют на 1-2 часа. Образующийся сверху сливкообразный слой отсасывают пипеткой с баллончиком, наносят на подогретое предметное стекло, подсушивают, фиксируют и окрашивают по Цилю - Нельсену.

Бактериологическое исследование применяют для идентификации микробов, определения их лекарственной устойчивости, вирулентности и т. д. Мокроту засевают на соответствующие питательные среды - плотные (кровяной агар) или жидкие (сахарный бульон, среды Тароцци), полусинтетическую среду Школьниковой; (цветн. рис. 3 и 4). Выросшие на соответствующих питательных средах микробы идентифицируют, определяют их патогенность (в некоторых случаях) и лекарственную устойчивость, предварительно определяют лекарственную устойчивость всей флоры мокроты в целом. Это производят путем посева кусочков мокроты, предварительно отмытых физиологическим раствором, на поверхность кровяного агара в чашке Петри. На посев раскладывают стандартные антибактериальные бумажные диски. О чувствительности флоры судят по величине зоны задержки роста флоры вокруг диска. Затем производят окончательное определение устойчивости каждого выделенного из мокроты вида бактерий отдельно. Для этого 18-часовую бульонную культуру каждого вида бактерий (стафилококки, стрептококки, клебсиеллы и др.) засевают газоном на чашки Петри с кровяным агаром. На газон раскладывают стандартные бумажные диски с антибиотиками, прижимая их пинцетом к поверхности агара так, чтобы они плотно прикасались к агару всей поверхностью. Чашки оставляют при комнатной температуре на 1,5-2 часа; за это время происходит достаточная диффузия препарата из дисков в окружающие агаровые слои. Затем чашки Петри помещают в термостат при t°37° на 18-24 часа. Об устойчивости исследуемого штамма судят по зоне задержки роста бактерий вокруг дисков. При отсутствии зоны задержки штамм считают устойчивым. Если образуется зона 1,5-2 см в диаметре, штамм считают слабо чувствительным, а при зоне более 2 см - чувствительным к данному антибиотику.

О посеве мокроты на микобактерии туберкулеза см. Туберкулез легких, исследование мокроты на микобактерии туберкулеза; об определении их чувствительности к антибиотикам см. Туберкулез легких, лекарственная устойчивость микобактерий.

При биологическом исследовании мокроты заражают животных. В качестве диагностического этот метод вытесняется культуральными способами.

Цель:

Диагностическая.

Показания:

Заболевания органов дыхания и ССС.

Оснащение:

Чистая стеклянная широкогорлая банка из прозрачного стекла, направление.

Последовательность действий :

1. Объяснить правила сбора, получить согласие.

2. Утром почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой.

3. Откашлять и собрать в банку 3-5 мл мокроты, закрыть крышкой.

4. Оформить направление.

5. Доставить в клиническую лабораторию в течение 2 часов.

Примечание:

Для определения суточного количества мокроту собирают в течение суток в одну большую посуду и хранят в прохладном месте.

Не допускается загрязнение банки с наружной стороны.

Оценивается: консистенция (вязкая, студенистая, стекловидная), цвет (прозрачная, гнойная, серая, кровянистая), клеточный состав (наличие лейкоцитов , эритроцитов , эпителия, дополнительных включений.

Сбор мокроты на бактериологическое исследование:

Цель:

Выявления возбудителя заболевания и определение чувствительности его к антибиотикам .

Оснащение:

Стерильная пробирка или банка с крышкой (заказывается в бак. лаборатории), направление.

Последовательность действий :

1. Объяснить цель и суть сбора мокроты, получить согласие.

2. Утром натощак после туалета полости рта и до назначения а/б.

3. Пробирку или банку поднести ко рту, открыть ее, не касаясь краев посуды руками и ртом откашлять мокроту и сразу закрыть крышкой, соблюдая стерильность.

4. Отправить анализ в баклабораторию в течение 2 часов в контейнере спецтранспортом. Примечание: стерильность посуды сохраняется в течение 3 суток.

Сбор мокроты на МБТ (микобактерии туберкулеза):

Цель:

Диагностическая.

Порядок сбора мокроты:

1. Объяснить суть и цель назначения, получить согласие.

2. Оформить направление.

3. Утром натощак после туалета полости рта после нескольких глубоких вдохов откашлять мокроту в чистую сухую банку (15-20 мл), закрыть крышкой. Если мокроты мало, то ее можно собирать в течение 1-3 суток, сохраняя в прохладном месте.

4. Доставить анализ в клиническую лабораторию.

Примечание : Если назначается посев мокроты на ВК, то мокрота собирается в стерильную посуду в течение 1 суток, храня в прохладном месте, и доставляется в баклабораторию.

Сбор мокроты на атипичные клетки:

Цель:

Диагностическая (диагностика, исключение онкопатологии).

Последовательность сбора :

1. Объяснить пациенту правила сбора мокроты.

2. Утром после туалета полости рта собрать мокроту в чистую сухую банку.

3. Оформить направление.

4. Доставить в цитологическую лабораторию сразу, т.к. атипичные клетки быстро разрушаются.

Правила пользования карманной плевательницей :

Плевательницей пользуются пациенты, выделяющие мокроту.

Запрещается:

Сплевывать мокроту на улице, в помещении, в платок, полотенце;

Проглатывать мокроту.

Плевательница дезинфицируются по мере заполнения, но не реже 1 раза в сутки. При большом количестве мокроты - после каждого использования.

Для обеззараживания мокроты: залить 10% хлорной известью в соотношении 1:1 на 60 мин или засыпать сухой хлорной известью из расчета 200 г/л мокроты на 60 мин.

При выделении или подозрении на ВК - 10% хлорная известь на 240 мин или сухая хлорная известь на 240 мин в тех же соотношениях; 5% хлорамином на 240 мин.

После обеззараживания мокроту сливают в канализацию, а посуду, в которой обеззараживалась мокрота, моют обычным способом с последующей дезинфекцией.

Обеззараживание карманных плевательниц: кипячение в 2% растворе соды 15 мин или в 3% хлорамин на 60 мин.

Исследование мокроты предусматривает определение физи­ческих свойств мокроты, ее микроскопическое исследование в нативном мазке и бактериологическое исследование в окрашен­ных препаратах.

Сбор материала

Мокроту, получаемую при откашливании утром до приема пи­щи, собирают в чистую сухую склянку. Перед исследованием боль­ной должен почистить зубы и тщательно прополоскать рот водой.

Физические свойства

Мокроту помещают в чашку Петри, рассматривают на светлом и темном фоне, описывают ее свойства. Количество мокроты за сутки при различных патологических процессах может быть раз­лично: так например, при бронхите - скудное (5-10 мл), при абсцессе легкого, бронхоэктазах - большое количество (до 200--300 мл).

Деление на слои наблюдается в случаях опорожнения боль­ших полостей в легком, например, абсцесса легкого. В этом случае мокрота образует 3 слоя: нижний слой состоит из детри­та, гноя, верхний слой - жидкий, на поверхности его иногда имеется третий - пенистый слой. Такую мокроту называют трехслойной.

Характер: характер мокроты определяет содержание слизи, гноя, крови, серозной жидкости, фибрина. Характер ее может быть слизистый, слизисто-гиойный, слизисто-гнойно-кровянистый и т.п.

Цвет: зависит от характера мокроты, от выдыхаемых частиц, которые могут окрашивать мокроту. Так например, желтоватый, зеленоватый цвет зависит от наличия гноя, "ржавая" мокрота -от распада эритроцитов, встречается при крупозной пневмонии. Прожилки крови в мокроте или красная мокрота может быть при примеси крови (туберкулез, бронхоэктазы). Серый и черный цвет придает мокроте уголь.

Консистенция: зависит от состава мокроты, жидкая - в ос­новном от наличия серозной жидкости, клейкая - при наличии слизи, вязкая - фибрина.

Запах: свежевыделенная мокрота обычно без запаха. Непри­ятный запах свежевыделенной мокроты обычно появляется при абсцессе легкого, при гангрене легкого - гнилостный.

Микроскопическое исследование

Нативные препараты готовят, выбирая материал из разных мecт мокроты, берут также для исследования все частицы, выде­ляющиеся окраской, формой, плотностью.

Отбор материала производят металлическими палочками, по­мещают его на предметное стекло и покрывают покровным. Мате­риал не должен выходить за покровное стекло.

Лейкоциты: всегда содержатся в мокроте, количество их зависит от характера мокроты.

Эозинофилы: распознаются в нативном препарате по более темной окраске и наличию в цитоплазме четкой, одинаковой, пре­ломляющей свет зернистости. Часто располагаются в виде больших скоплений. Эозинофилы встречаются при бронхиальной астме, других аллергических состояниях, гельминтозе, эхинококке лег­кого, новообразованиях, эозинофильном инфильтрате.

Эритроциты: имеют вид дисков желтого цвета. Единичные эритроциты могут встречаться в любой мокроте, в большом коли­честве - в мокроте, содержащей примесь крови: новообразовани­ях легкого, туберкулезе, инфаркте легкого.

Клетки плоского эпителия: попадают в мокроту из полости рта, носоглотки, большого диагностического значения не тлеют.

Цилиндрический мерцательный эпителий: выстилает слизистую оболочку гортани, трахеи, бронхов. В большом количестве обнаруживается при острых катарах верхних дыхательных путей, бронхитах, бронхиальной астме, новообразованиях легкого, пневмосклерозе и др.

Альвеолярные макрофаги: большие клетки различной величи­ны, чаще круглой формы, с наличием в цитоплазме включений черно-бурого цвета. Встречаются чаще в слизистой мокроте с небольшим количеством гноя. Обнаруживаются при различных па­тологических процессах: пневмонии, бронхитах, профессиональ­ных заболеваниях легких и др. Альвеолярные макрофаги, содер­жащие гемосидерин, старое название - "клетки сердечных поро­ков", имеют в цитоплазме золотисто-желтые включения. Для их выявления применяют реакцию на берлинскую лазурь. Ход реакции: кусочек мокроты помещают на предметное стекло, прибавляют 2 капли 5% раствора соляной КИОЛОТЫ и 1-2 капли 5% раствора желтой кровяной соли. Перемешивают стеклянной палочной и по-крывают покровным стеклом. Гемосидерин, лежащий внутриклеточно, окрашивается в голубой или синий цвет. Эти клетки обнару­живаются в мокроте при застойных явлениях в легких, инфарктах легкого.

Жирное перерождение клетки (липофаги, жировые шары): чаще округлые, цитоплазма их заполнена жиром. При прибавлении к препарату судана Ш капли окрашиваются в оранжевый цвет. Группы таких клеток встречаются при новообразованиях легкого, актиномикозе, туберкулезе и др.

Эластические волокна: в мокроте имеют вид извзитых блес­тящих волокон. Как правило располагаются на фоне лейкоцитов и детрита. Наличие их указывает на распад ткани легкого. Обнаруживаются при абсцессе, туберкулезе, новообразованиях легко­го.

Коралловые волокна: Грубые ветвящиеся образования с буг­ристыми утолщениями вследствие отложения на волокнах жирных кислот и мыл. Их обнаруживают в мокроте при кавернозном тубер­кулезе.

Обызвествленные эластические волокна - грубые, пропитанные солями извести палочковидные образования. Обнаруживают при распаде петрифицированного очага, абсцессе легкого, ново­образованиях, Элемента распада петрифицированнго очага носят название тетрады Эрлиха: I) обызвествленные эластические во­локна; 2)аморфные соли извести; 3) кристаллы холестерина; 4) микобактерии туберкулеза.

Спирали Куршма на_- уплотнены, закрученные в спираль слизевые образования. Центральная часть резко преломляет свет и выглядит спиралью, по периферии свободно лежащая слизь обра­зует мантию. Спирали Куршмана образуются при бронхиальной астме.

Кристаллические образования: кристаллы Шарко-Лейдена, вы­тянутые блестящие ромбы, можно обнаружить в желтоватых кусоч­ках мокроты, содержащих большое количество эозинофилов. Их образование связывают с распадом эозинофилов,

Кристаллы гематоидина: имеют форму ромбов и иголок золо­тистого цвета. Образуются при распаде гемоглобина при крово­излияниях, распаде новообразований. В препарате мокроты видны обычно на фоне детирита, эластических волокон.

Кристаллы холестерина: бесцветные четырехугольники с обло­манными ступенеобразным углом, обнаруживаются при распаде жирно перерожденных клеток, в полостях. Встречаются при туберку­лезе, абсцессе легкого, новообразованиях.

Пробки Дитриха: мелкие желтовато-серые зернышки с непри­ятным запахом, содержатся в гнойной мокроте. Микроскопически представляют собой детрит, бактерии, кристаллы жирных кислот в виде игл и капелек жира. Образуются при застое мокроты в полостях при абсцессе легкого, бронхоэктазах.

Бактериологическое исследование

Исследование на туберкулезные микобактерии: Препарат готовят из гнойных частиц мокроты, высушивают

на воздухе и фиксируют над пламенем горелки. Окрашивают по

Цилю-Нильсону.

Методика окрашивания: Реактивы:

I) карболовый фуксин,

2) 2% спиртовой раствор соляной кислоты,

3) водный раствор 0,5% метиленового синего.

Ход окраски:

1. На препарат кладут кусочек фильтровальной бумаги и наливают раствор карболового фуксина.

2. Препарат нагревают над пламенем горелки до появления паров, охлаждают и снова нагревают (так 3 раза).

3. С остывшего стекла снимают фильтровальную бумагу. Обесцвечивают мазок в солянокислом спирте до полного отхождения краски.

4. Промывают водой.

5. Докрашивают препарат метиленовнм синим 20-30 секунд.

6. Промывают водой и высушивают на воздухе. Микроскопируют с иммерсионной системой. Туберкулезные микобактерии окрашиваются в красный цвет,

все остальные элементы мокроты и бактерии - в синий. Туберку­лезные микобактерии имеют вид тонких, слегка изогнутых пало­чек с утолщениями на концах или посередине.

При окраске по Цилю-Нильсону в красный цвет красятся также кислотоупорные сапрофиты. Дифференциальная диагностика туберкулезных микробактерий и кислотоупорных сапрофитов ведет­ся методами посева и заражения животных.

Исследование мокроты может проводиться также методом фло­тации. Метод Потенжера: ход исследования:

1. Свежевыделенную мокроту (не более 10-15 мл) помещают в узкогорлую бутылку, приливают двойное количество едкой ще­лочи, смесь энергично встряхивают (10-15 мин).

2. Приливают I мл ксилола (можно бензина, толуола) и около 100 мл дистиллированной вода для разжижения мокроты. Снова встряхивают 10-15 мин.

3. Доливают дистиллированную воду до горлышка бутылки и оставляют стоять на 10-50 мин.

4. Образовавшийся верхний слой (беловатый) снимают по каплям пипеткой и наносят на предметные стекла, предвари­тельно нагретые до 60°. Каждую последующую каплю наносят на подсохшую предыдущую.

5. Препарат фиксируют и красят по Цилю-Нильсону.

Исследование на другие бактерии:

Другие бактерии, встречающиеся в мокроте, например, стрептококки, стафилококки, диплобациллы и др. могут быть распознаны только методом посева. Бактериологическое иссле­дование препарата в этих случаях имеет только ориентировоч­ное значение. Препараты красят метиленовым синим, фуксином или по граму. Окраска по Граму: Реактивы: I) карболовый раствор генцианвиолета,

2) раствор Люголя,

3) 96° спирт,

4) 40% раствор карболового фуксина.

Ход исследования:

1. На фиксированный препарат кладут полоску фильтроваль­ной бумаги, наливают раствор генцианвиолета, красят 1-2 мин.

2. Бумажку снимают и препарат заливают раствором Люголя на 2 минуты.

3. Раствор Люголя сливают и прополаскивают препарат в спирте до серого цвета.

4. Промывают водой и окрашивают 10-15 секунд раствором фуксина.

Бактериологическое исследование мокроты даёт возможность обнаружить возбудителей различных заболеваний. Важное значение для постановки диагноза имеет нахождение в мокроте туберкулёзных микобактерий. Мокроту для бак – исследования на посев собирают в стерильную посуду (широкогорлую). Посуда выдаётся бак – лабораторией.

ВНИМАНИЕ!!!

Если мокроты мало, её можно собирать до 3-х суток, сохраняя её в прохладном месте.

Мокроту на бак – посев у туберкулёзных больных для достоверности результата собирают в течение 3-х дней, в разные стерильные ёмкости (3 банки).

При необходимости назначения антибиотиков, мокроту исследуют на чувствительность к ним. Для этого пациент утром, после споласкивания рта, откашливается и сплёвывает несколько раз мокроту (2-3 раза) в стерильную чашку Петри, которую тут же направляют в лабораторию.

ВНИМАНИЕ!!!

Дайте чёткий инструктаж пациенту об использовании стерильной посуды для сбора мокроты на анализ:

а) не касаться краёв посуды руками

б) не касаться краёв ртом

в) после отхаркивания мокроты посуду сразу закрыть крышкой.

Т/О п.7

В бак – лабораторию

Мокрота на микрофлору и

чувствительность к

антибиотикам (а/б)

Сидоров С.С. 70 лет

3/IV– 00 г. подпись м/с

Анализ мокроты на бактериологическое исследование.

Цель : обеспечить качественную подготовку к исследованию и своевременное получение результата.

Подготовка : информирование и обучение пациента.

Оснащение : стерильная банка (плевательница), направление.

Последовательность выполнения:

Объяснить пациенту (члену семьи) смысл и необходимость предстоящего исследования и получить его согласие на исследование.

А) в стационарных условиях:

инструктаж и обеспечение лабораторной посудой провести накануне вечером;

Б) в амбулаторных и стационарных условиях объяснить пациенту особенности подготовки:

накануне вечером тщательно почистить зубы;

утром после сна тщательно прополоскать рот кипячёной водой

Проинструктировать пациента о правилах обращения со стерильной лабораторной посудой и о сборе мокроты:

Откашляться, открыть крышку банки (плевательницы) и сплюнуть мокроту, не касаясь краёв банки;

Сразу же закрыть крышку.

Попросить пациента повторить всю информацию, задать вопросы по технике подготовки и сбора мокроты.

Указать, к каким последствиям приведёт нарушение рекомендаций медсестры.

А) в амбулаторных условиях:

Дать направление на исследование, заполнив его по форме;

Объяснить пациенту, куда и какое время он (семья) должны принести банку и направление.

Б) в условиях стационара:

Указать место и время, куда принести банку (плевательницу);

Доставить собранный материал в бактериологическую лабораторию не позднее 1,5 – 2,0 часов после сбора материала.

Хранение материала даже в условиях холода недопустимо!

Взятие кала на анализ.

Большую помощь в распознавании ряда заболеваний, в том числе и желудочно-кишечных, оказывает исследование кала. Определение основных свойств кала путём осмотра даёт возможность сделать ряд диагностических выводов и доступно сестре.

Суточное количество кала у здорового человека зависит от качества и количества пищи, и в среднем равно 100 – 120 г. Если всасывание нарушено, а скорость продвижения по кишечнику увеличена (энтериты), количество кала может достигать 2500 г, при запорах же кала очень мало.

В норме – опорожнение кишечника совершается один раз в сутки, обычно в одно и то же время.

ВНИМАНИЕ!!!

Для исследования кал лучше брать после самостоятельного акта дефекации в таком виде, в каком он выделяется.

бактериологически

макроскопически

Кал исследуют микроскопически

химически

Макроскопически определяют:

А) цвет, плотность (консистенцию)

Б) форму, запах, примеси

Цвет –в норме

при смешанной пище – желтовато-бурый, коричневый;

при мясной – тёмно-коричневый;

при молочной – жёлтый или светло-жёлтый;

у новорожденного – зеленовато-жёлтый.

ПОМНИТЕ!!! Цвет кала могут изменить:

Фрукты, ягоды (черника, смородина, вишня, мак и др.) – в тёмный цвет.

Овощи (свекла, морковь и др.) – в тёмный цвет.

Лекарственные вещества (соли висмута, железа, йода) – в чёрный.

Наличие крови даёт калу чёрный цвет.

Консистенция (плотность) кала мягкая.

При различных патологических состояниях кал может быть:

Кашицеобразным

Умеренно плотным

2. Полужидким

   Замазкообразным (глинистым), часто бывает серого цвета и зависит от значительной примеси не усвоенного жира.

Форма кала – в норме цилиндрическая или колбасовидная.

При спазмах кишечника кал может быть лентовидным или в виде плотных шариков (овечий кал).

Запах кала зависит от состава пищи и интенсивности процессов брожения и гниения. Мясная пища даёт резкий запах. Молочная – кислый.

Называются патологические выделения дыхательных органов, которые выбрасываются при кашле. При проведении лабораторных исследований мокроты становится возможным характера патологического процесса в дыхательной системе, в ряде случаев становится возможным определение его этиологии. Для этого проводят следующие действия:

• мокрота собирается в целях проведения общего клинического анализа;
• мокрота собирается для выявления туберкулеза в дыхательных органах;
• мокрота собирается для выявления атипичных клеток;
• мокрота собирается для определения чувствительности к антибиотикам.

Область плевры здорового человека содержит некоторое количество жидкости, которая облегчает скольжение листков плевры при дыхании и по составу очень близка к лимфе. В случаях нарушения обращения крови и лимфы в полости лёгких возможно увеличение объёма плевральной жидкости. Это может происходить как при воспалительных изменениях плевры (экссудат), так и при процессах, протекающих при условии отсутствия воспаления. Первичная клиническая инфекция плевры может способствовать проявлению экссудата либо же он может сопутствовать некоторым общим инфекциям и в случае определённых болезней лёгких и средостения, таких, как ревматизм, инфаркт, туберкулёз и рак лёгких, лимфогранулематоз. Плевральная жидкость исследуется в следующих целях: определение её характера; изучение клеточного состава жидкости, содержащего информацию о свойствах патологического процесса, а в некоторых случаях (при опухолях) и о диагнозе; при поражениях инфекционного характера выявление возбудителя и определение его чувствительности к антибиотикам. Анализ плевральной жидкости включает в себя проведение физико-химического, микроскопического, а в некоторых случаях и микробиологического и биологического исследований.

Методы исследования мокроты

Для исследования мокроты в органах дыхания применяется рентгенография, рентгеноскопия, бронхография и томография лёгких.

Рентгеноскопия представляет собой наиболее распространённый метод исследований, позволяющий визуально определить, как меняется прозрачность лёгочной ткани, обнаружить места уплотнения либо полости в её структуре, определить наличие воздуха в плевральной полости и прочие патологии.

Рентгенография проводится с целью регистрации и документации обнаруженных при проведении рентгеноскопии изменений в дыхательной системе, проявляющихся на рентгеновской плёнке. Патологические процессы, которые протекают в лёгких, могут привести к потере воздушности с последующим уплотнением ткани лёгких (инфаркт лёгкого, пневмония , туберкулёз). При этом здоровая лёгочная ткань на плёнке негатива будет темнее соответствующих участков лёгких. Полость лёгкого, в которой содержится воздух, находящаяся в окружении воспалительного валика, будет иметь вид овального тёмного пятна в бледной тени лёгочной ткани. Жидкость, содержащаяся в плевральной плоскости, пропускает меньшее количество рентгеновских лучей по сравнению с тканью лёгких, оставляет на негативной плёнке рентгена тень, имеющую более темный оттенок в сравнении с тенью ткани лёгких. Проведение рентгенографии даёт возможность определить количество жидкости в плевральной полости и её характер. В том случае, если в полости плевры находится воспалительная жидкость или экссудат, её уровень контакта с лёгкими имеет вид косой линии, имеющей направление вверх от линии средней ключицы. Если же имеет место накопление невоспалительной жидкости либо транссудата в полости плевры, её уровень расположен более горизонтально.

Бронхография проводится в целях исследования бронхов. После того, как будет проведена предварительная анестезия дыхательных путей, в просвет бронхов вводится контрастное вещество, которое задерживает рентгеновские лучи. После этого проводится рентгенография лёгких в целях получения на рентгенограмме чёткого изображения дерева бронхов. Данный метод даёт возможность проведения диагностики расширения бронхов, а также их сужения в результате опухоли либо попадания в просвет бронхов инородного тела.

Томография лёгких представляет собой особый вид рентгенографии, который даёт возможность проведения послойного рентгенологического исследования лёгких. Она проводится для определения наличия опухолей в бронхах и лёгких, каверн и полостей, находящихся в лёгких на разной глубине.

Сбор мокроты на исследование

Сбор мокроты на исследование лучше всего производить в утреннее время, поскольку ночью происходит её накопление, и до приёма пищи. Предварительная чистка зубов щёткой и полоскание рта кипячёной водой обеспечивают достоверность анализа мокроты. Всё это даёт возможность существенно снизить обсеменённость бактериями ротовой полости.

Для сбора мокроты используют специальный разовый герметичный флакон, выполненный из материала, обладающего достаточной ударостойкостью и плотно закрывающейся крышкой либо колпачком, который плотно навинчивается. Необходимо, чтобы флакон обладал ёмкостью 25-50 мл и широким отверстием. Это требуется для того, чтобы пациент имел возможность сплёвывать мокроту внутрь флакона. Для возможности оценки качества и количества пробы, которую удалось собрать, материал, из которого изготовлен флакон, должен быть полностью прозрачным.

В том случае, если собранную мокроту требуется транспортировать в иное учреждение, до момента её отправки флаконы с собранным материалом следует хранить в холодильнике не более трёх дней. Если хранить необходимо на протяжении большего времени, следует применять средства консервации. При осуществлении транспортировки мокроту нужно защищать от воздействия ветра и прямых лучей солнца.

Исследование мокроты на общий анализ

Исследование мокроты на общий анализ обычно начинается с осмотра её внешнего вида. При этом соблюдаются некоторые общие правила: прозрачная слизь означает стандартную внешнюю мокроту, воспалительный процесс характеризуется наличием мутной мокроты. Серозная мокрота цвета не имеет, отличается жидкой консистенцией и наличием пены. Её выделение происходит при отёке лёгких.

Гнилостная мокрота характеризуется наличием гноя. Цвет её зелёный и жёлтый. Чаще всего гнилостная мокрота наблюдается при прорыве в бронх абсцесса лёгкого, в большинстве случаев она бывает в виде смеси гноя и слизи.

Зелёная мокрота присутствует при патологии, связанной с замедлением оттока. Это может быть гайморит, бронхоэктаз, нарушения после туберкулёза. В том случае, если зелёная мокрота появляется у детей подросткового возраста, предполагать хронический бронхит не следует, также можно исключить лор-патологию.

Аллергическая реакция и эозинофилия определяются по появлению мокроты янтарно-оранжевого цвета.

Лёгочные кровотечения характеризуются появлением мокроты кровянистого оттенка, либо же смешанной, в частности слизисто-гнойной с кровяными прожилками. При задерживании крови в дыхательных путях имеет место превращение гемоглобина в гемосидерин с последующим приобретением мокротой ржавого оттенка. Присутствие крови в мокроте является настораживающим фактором, который требует специального исследования.

Мокрота жемчужного цвета отличается округлыми опалесцирующими включениями, состоящими из детрита и атипичных клеток. Наблюдается при плоскоклеточном раке лёгких.

Бактериологическое исследование мокроты

Проведение бактериологического исследования мокроты позволяет установить наличие возбудителей лёгочных заболеваний. Гнойный комок мокроты с кровью растирается между двумя стёклами. Затвердевшие мазки подлежат фиксации на огне, после чего один из них окрашивается в соответствии с методом окраски Грама, а другой - с методом окраски Циля-Нильсена. Первый метод окраски позволяет обнаружить грамположительные микробы, второй - бактерии туберкулёза. На мазок следует наложить кусок фильтровальной бумаги, по площади равный самому мазку, на него налить фуксин Циля и нагреть на нежарком пламени до того, как появятся пары. После того, как бумажка будет сброшена, мазок следует опустить в раствор серной кислоты, концентрации 5-10 % либо раствор соляной кислоты, концентрации 3 % для его обесцвечивания, после чего следует хорошо промыть его водой. Затем на протяжении половины минуты следует докрасить раствором синего метиленового, концентрации 0,5 %, после чего снова производится промывка водой. На голубом фоне препарата хорошо отображаются красные микобактерии. В том случае, если микобактерии туберкулёза не находятся в мазке, применяется метод их накопления - флотации. 15-25 мл мокроты помещаются в ёмкость объёмом четверти литра, в неё добавляется двойной объём раствора едкого натрия, концентрации 0,5 %, после чего полученная смесь взбалтывается до получения эффекта полного растворения мокроты. Добавляется 100 мл дистиллированной воды с 2 мл толуола, смесь взбалтывается на протяжении пятнадцати минут, после чего её доливают водой из горлышка бутылки и выдерживают на протяжении двух часов. Сверху образуется слой, своей консистенцией напоминающий сливки, его отсасывают при помощи пипетки с баллончиком и каплями наносят на подогретое стекло, всякий раз на предыдущую высохшую каплю. Затем препарат фиксируют и наносят по принципу Циля-Нильсена. Если результат отрицательный - следует прибегать к бактериологическому посеву мокроты или прививке её животному (биологическое исследование). Для того, чтобы определить, насколько флора мокроты чувствительна к антибиотикам, прибегают к её посевам.

Микроскопическое исследование мокроты

Микроскопическое исследование мокроты состоит из изучения окрашенных и нативных (необработанных, естественных) препаратов. Для последних отбираются гнойные, крошковатые, кровянистые комочки, их располагают на предметном стекле в таком объёме, чтобы при накрытии покровным стеклом образовался тонкий полупрозрачный препарат. Если увеличение микроскопа малое, могут быть обнаружены спирали Киршмана, имеющие вид растяжек слизи различной толщины. В их состав входит центральная осевая линия, которую окутывает спиралеобразная мантия с вкраплением лейкоцитов. Такие спирали появляются в мокроте при спазме бронхов. Применяя большое увеличение, можно обнаружить в нативном препарате лейкоциты, альвеолярные макрофаги, эритроциты, клеточные образования, характерные для пороков сердца, плоский и цилиндрический эпителий, всевозможные грибки, раковые клетки, эозинофилы. Лейкоциты представляют собой круглые зернистые клетки. Эритроцитами называются желтоватые гомогенные диски небольшого размера, появление которых характерно для мокроты при пневмонии, инфаркте лёгкого и разрушении лёгочной ткани. Альвеолярные макрофаги - это клетки, втрое большие, чем эритроциты, обладающие крупной обильной зернистостью в цитоплазме. Цилиндрический эпителий дыхательных путей определяется по бокаловидной или клиновидной форме клеток. В большом количестве он появляется при катаре дыхательных путей и остром бронхите. Плоский эпителий представляет собой большие клеточные образования с множеством углов, не имеющие диагностического значения и происходящие из ротовой полости. Раковые клетки определяются по крупным ядрам, для распознавания природы которых, необходим существенный опыт исследователя. Клетки эти большие по размеру и отличаются неправильной формой.

Макроскопическое исследование мокроты

При проведении макроскопического исследования мокроты внимание обращается на её количество и характер, запах, цвет, консистенцию, наличие всевозможных включений и слизистость.

Состав мокроты определяет её характер.

Слизистая мокрота включает в себя слизь - продукт деятельности слизистых желез дыхательной системы. Её выделение происходит при острых бронхитах, разрешениях приступов бронхиальной астмы, катаре дыхательных путей.

Слизисто-гнойная мокрота представляет собой смесь гноя и слизи, с преобладанием слизи и включением гноя в виде мелких комочков и прожилок. Её появление имеет место при гнойных воспалениях, бронхопневмониях, острых бронхитах.

Гнойно-слизистая мокрота состоит из гноя и слизи с преобладание гноя, при этом слизь представлена в виде тяжей. Её появление характерно для хронических бронхитов, абсцедирующей пневмонии, бронхоэктазов.